圣地亚哥,我们来啦!

全年气候宜人的浪漫海滩,

地中海风格的慵懒村庄,

世界级的公共艺术,

还有棒球、啤酒、嬉皮士

这些让你想到了什么?没错,美国加州圣地亚哥!这座充满迷人风情的太平洋沿岸港市即将于2019年1月12日-16日为第27届国际动植物基因组学大会(Plant & Animal Genome Conference, PAG)迎来世界各地的学术宾客!

沐浴在加州暖煦的海风下,各种肤色欢聚一堂,共襄组学盛世,既能高谈阔论,又可把酒言欢,真是美事一桩。

此次会议在Town & Country Hotel会议中心举行,未来组的小伙伴们在626号展位等您,把脑洞打开,一起为动植物基因组学的研究放飞新思路吧!

PAG会议是国际知名的基因组学盛会,世界各地的专家学者集聚一堂,报告、研讨模式生物、畜禽、水生生物、作物、微生物等各物种领域的基因组学进展,内容涉猎广泛深入,是动植物基因组学领域最高水平的国际会议。由于每年PAG会议都会有一系列新的课题进展和研究方法的发布,它已经成为动植物基因组学领域的学者们最为关注的国际盛会之一。

PAG XXVI Plenary Speakers

回首2018,未来组先后与新加坡国立大学、中国农业大学农业生物技术国家重点实验室及国家玉米改良中心等单位合作,在Developmental Cell杂志发表了国内首篇应用三代测序技术完成的拟南芥全基因组甲基化修饰(6mA)的文章,解析6mA在拟南芥中的分布模式和潜在功能,在Nature Genetics上发表了重要玉米品系Mo17的高质量参考基因组。同月,希望组与中山大学中山眼科中心等单位合作,在Molecular Cell杂志发表了首个中国人DNA  N6-甲基腺嘌呤(6mA)修饰图谱,揭示了DNA 6mA甲基化修饰在人类基因组中的调控机制。

此次的年度盛会如约而至,未来组又将和世界各地的动植物基因组学者们碰撞出什么样的火花呢?想想有些小激动啊!

经过一年的沉淀,组学君又有哪些闪闪发光的研发动态照亮您的心?来吧,再次诚邀国内外参会学者莅临展位626,组学君迫不及待要分享未来组在动植物基因组学研究中的新成果和新进展啦!

会场详情:https://pag19.mapyourshow.com/7_0/exhview/

会议内容缤彩纷呈,包罗万象,更多详情请访问PAG官网。http://www.intlpag.org/2019/

新年开讲啦|“未来组”遗传与进化前沿交叉论坛第六期与您相约

2018年伊始,未来组与中国科学院昆明动物所遗传资源与进化国家重点实验室达成长期学术交流合作协议,独家冠名赞助该国重2018年“遗传与进化交叉论坛”等一系列学术会议,共同推动中外动物基因组学信息流通和交流合作。

2019年1月4日,“未来组”遗传与进化前沿交叉论坛第六期将于在昆明动物研究所西南生物多样性实验室1-24-26报告厅举行。报告人:Antonio Torroni、Ornella Semino、Hans-Jürgen Bandelt。论坛详情请戳下图:

 关于中国科学院昆明动物所遗传资源与进化国家重点实验室 

该实验室立足于我国西南和东南亚丰富的生物多样性遗传资源,面向战略生物资源的国家需求和世界科技前沿,在遗传资源多样性的演化与保护、基因与基因组的进化、遗传发育与进化三个重点研究方向上打下坚实的基础。

 关于武汉未来组 

武汉未来组专注三代测序技术的研发与应用多年,拥有PacBio、Oxford Nanopore、MGISEQ、BioNano光学图谱及Hi-C染色体构象捕获等技术平台,同时搭载天河II号、阿里云和华为云等服务器,通过三代测序生物信息学工具和流程的开发,解决了复杂动植物基因组组装、微生物基因组组装、全长转录组分析、人类基因组变异检测等领域的技术瓶颈,合作发表多篇三代测序基因组文章,致力打造世界领先三代测序基因组中心。

武汉未来组生物科技有限公司与中国科学院昆明动物所遗传资源与进化国家重点实验室的合作共同致力于突破中外动物基因组学研究的瓶颈,推动组学领域的发展,是学术与技术的融汇互通、技术进步与成果转化的沟通桥梁。未来组期待与更多的科研伙伴进行多元化的深层合作交流。

本次学术报告由

武汉未来组生物科技有限公司独家冠名赞助!

未来组诚邀您参与!

温故2018|积跬步行万里路

2018的尾声即将敲响,又是一年温故迎新的时节。未来组的2018年充满蓬勃朝气,这一年来,未来组的苦心积淀终于迎来爆发态势,不仅收获了赞誉和成果,更迎来新的气象和更广阔的天地。作为第三代测序技术应用的探路者,未来组将用宏大的视觉瞄准整个国际测序市场,以拼搏奋进之姿进一步拓宽产业布局。

2018年是未来组成立七周年,七年来,未来组的快速成长大家有目共睹。下面就让组学君为大家细数未来组2018年的七大事件,看未来组如何一步一个脚印走到今天!

01
资质篇

2018年1月17日,未来组通过Oxford Nanopore Technologies Limited(牛津纳米孔技术有限公司,ONT)官方认证,获得Nanopore DNA测序认证服务供应商资质。6月21日,又顺利通过Oxford Nanopore公司官方质量体系考核,再获PromthION平台DNA测序认证服务供应商资质。两项资质认证是ONT对未来组的莫大首肯,预示着未来组将先于同行业开辟三代测序技术的新征程。

未来组&希望组CEO汪德鹏先生表示:“Oxford Nanopore推出的PromethION平台,是DNA测序历史上一个里程碑式的新技术平台,类似半导体芯片产业的EUV光刻机平台,是基因组医学、医疗大数据等领域的基础性平台。”

2018年,华大基因、百迈客、诺禾致源、安诺优达等测序公司都相继搭载了ONT平台,三代测序技术的普及已是大势所趋。未来组凭借在三代测序领域积淀多年的丰富经验,PromethION刚稳定运行就得到了十分亮眼的评测数据,单个cell产出突破110G!

未来组–中国首家通过Nanopore官方测序服务认证
突破| 北京希望组(GrandOmics)正式面向全球提供基于PromethION平台的人类基因组重测序及生物信息学服务
佳节喜讯| 未来组打破记录!双节感恩大酬宾啦!
02
荣誉篇

2018年3月7号,未来组获颁“2017年度光谷生物城高成长性企业奖”,昭示未来组成为发展速度快、能带来高效益且具有高增值能力,能引起当代生产领域的变革、处于当代经济前沿的企业之一。11月13日,由德勤中国和武汉东湖新技术开发区管理委员会共同主办的第五届光谷高科技高成长20强暨明日之星颁奖典礼宣布未来组位列“光谷20强”榜单!本活动旨在发现和表彰光谷高成长、持续创新的卓越企业,未来组的入选充分肯定了我司的良好发展态势,也有助于进一步提升品牌影响力和企业竞争力。

成立7年来,未来组始终致力于推动第三代测序技术在各个领域的深度应用,每年保持3-5倍的高速增长。基于持续升级的研发投入,未来组将进一步加强和完善人才队伍结构,加快新产品和服务开发的脚步,进一步扩大营销市场,创建生物测序行业国际化的新高地。

未来组“高成长性企业”榜上有名
未来组荣登2018“光谷20强”
03
业绩篇
2018年7月2日,未来组&希望组宣布完成由远毅资本领投,昌平科技产业母基金(昌发展管理基金)和老股东经纬中国跟投的近亿元人民币B轮融资。这是继2016年底获得由经纬中国主领投、赛富投资共领投、清科创投跟投的A轮融资后再次成功融资。
希望组集团拥有“未来组”和“希望组”两大品牌,分别面向科研和临床用户。B轮融资完成后,未来组基于与日俱增的业务需求,不仅增加了研发投入,更进一步扩大平台,积极争取积累更多的知识产权,并继续加强与科研院校的深入合作,为全球的科研合作伙伴提供更前沿、更全面的三代测序服务,推进国内三代测序技术在动植物、微生物中的应用。同时希望组也将推进三代测序技术在遗传病领域的临床应用落地,实现成为技术研发驱动、临床应用落地、国内国际均衡发展的全球三代测序应用领域领军企业的战略目标。 
北京希望组完成近亿元B轮融资,瞄准全球三代测序应用领军企业战略
04
布局篇

2018年4月22日,中国农业科学院深圳农业基因研究组所联合浙江大学、西南大学等单位共同推出“TOP1000昆虫基因组计划”。未来组将为该计划提供三代长读长高通量测序分析,助力完成1000种昆虫基因组图谱绘制,促进我国昆虫学研究的深入,加强昆虫基因组学领域的交流和合作。4月27日,希望组也重磅推出“华夏万人SV”项目,这是继“华夏一号”和“中华家系一号”后的又一重大计划,旨在构建中国人基因组结构变异图谱及相关疾病基因组结构变异数据库,明确广泛的疾病和病症相关的罕见遗传变异。这将对中国人群基因组学研究、遗传性疾病研究、精准医疗应用等领域产生重要的科学及临床价值。

12月6日,未来组&希望组与华为技术有限公司正式建立合作伙伴关系,此举将充分发挥华为云在计算、存储、网络等领域的技术优势,利用希望组&未来组三代测序平台和产品,努力攻克技术壁垒,通力打造适用三代测序技术的智能化平台。至此,未来组在实现国际前沿的测序技术配置后又开启了更广泛的技术服务输出和云计算平台合作,未来将有更雄厚的实力进一步吸引优势资源的整合配置,拓宽产业布局的范围,不仅要完成产业升级,更要实现合作双赢。

未来已来,未来组长读长测序助力“TOP1000昆虫基因组计划”
长读长测序技术“让未被诊断的,被诊断”,“华夏万人SV”项目正式启动
强强联手 | 希望组&未来组与华为深度交流并签署战略合作协议未来
05
研发篇

未来组自成立以来逐步加大基于第三代测序技术的实验研发投入,并在超长reads上实现了突破。在对某哺乳动物DNA进行ONT测序辅以20×ultra-long reads后组装基因组Contig N50提升至41Mb,超过目前所有已发表动物基因组组装指标!

同时,未来组基于Nanopore PromethION平台的细菌混测研发也成果喜人——单个flowcell混测11个细菌,总产出数据量达97Gb,barcode 拆分效率近90%!

另外未来组在PacBio Sequel平台基于新版本试剂和软件(软件V6.0、试剂V3.0)的产出和读长上也都得到了显著的提升效果——基因组测序单个SMRT cell产出突破22.92Gb,polymerase reads 平均读长超过50Kb!研发能力是服务品质和企业实力的体现,未来组在第三代测序技术上展现的研发潜力和创新水平是在测序领域苦心沉积多年的结果,秉持“突破”“引领”“创新”理念的未来组将继续用做学问的严谨态度探索科学的边界,为更多的科研合作伙伴提供优质的服务。

未来组再破纪录!ONT细菌混测数据惊艳亮相
久等了!未来组携最新升级版Sequel数据前来报道
06
成果篇

2018年4月,未来组与新加坡国立大学等单位合作,在Develomental Cell杂志发表了国内首篇应用三代测序技术完成的拟南芥全基因组甲基化修饰(6mA)的文章,解析6mA在拟南芥中的分布模式和潜在功能。

7月,未来组与中国农业大学农业生物技术国家重点实验室及国家玉米改良中心等单位合作,在Nature Genetics上发表了重要玉米品系Mo17的高质量参考基因组,揭示玉米种内广泛的遗传变异,并发现了种内特有的基因顺序及基因结构变异可能对杂种优势和基因组进化产生影响。同月,希望组与中山大学中山眼科中心等单位合作,在Molecular Cell杂志发表了首个中国人DNA  N6-甲基腺嘌呤(6mA)修饰图谱,揭示了DNA 6mA甲基化修饰在人类基因组中的调控机制。

优异的学术成果助力未来组在生命科学领域中国科研机构榜单上荣列第171名,希望组荣列第237名。

收获是对过去努力的褒奖,相信2019年,未来组将再接再厉,取得更耀眼的成绩!

未来组项目经验丨国内首篇应用三代测序技术直读真核生物甲基化修饰(6mA)文章在线

Nature Genetics | 三代测序揭示玉米种内存在广泛的基因结构变异重大突破| 三代测序助力人类基因组DNA 6mA甲基化研究

2018自然指数更新!未来组&希望组榜上有名

7
企业篇

2018年8月8日,未来组举办了成立七周年庆典活动,除了庆祝乔迁至武汉软件新城外,更隆重宣布成立未来组基因组编辑中心和武汉希望组医学检验实验室,同时第一届未来组青年科学家论坛也拉开了序幕,多位微生物组学领域的前沿学者欢聚一堂,共享学术盛宴。

目前,武汉未来组总部设立在武汉软件新城的智慧健康园,毗邻风景秀丽的严西湖,占地4500m2,拥有PacBio、Oxford Nanopore、MGISEQ、BioNano光学图谱及Hi-C染色体构象捕获等技术和平台,同时在华为云、天河二号及阿里云上搭建高性能集群用于生信分析,为高等院校和科研院所提供动植物基因组、全长转录组、表观基因组、微生物基因组、宏基因组和结构变异检测等领域的科研服务,已完成了数百个三代测序科研项目,合作发表了一系列高质量的三代技术文章。

“科学的边界、技术的极限、人文的关怀、伦理的底限”一直是给予我们动力、引导我们方向的价值观,未来组从未停止创新的步伐,也从未放缓探索的脚步,为更多的研究合作伙伴提供完善的基因测序分析服务!

未来组成功举办七周年庆典

瑞雪兆丰年,全国范围的降雪似乎在欢迎2019年的到来,也预示着新的一年将国泰民康,风调雨顺。不积跬步无以致千里,我们不仅要走千里,更要一步一个脚印,用跋涉万里、十万里、百万里的雄心壮志,打造世界领先的三代测序基因组中心!

测序行业犹如逆水行舟,未来组将继续迈开脚步,锐意改革,进一步才能海阔天空。2019年,未来组将全面升级平台、产品、生物信息分析能力以及云计算、存储效率并优化产业布局、拓展国际市场,在这里组学君感谢一直以来关注我们、支持我们的合作伙伴和科研朋友。

未来组承诺将秉持以人为主的科学发展观,坚守科学探索的伦理底线,实事求是、稳打稳扎,创造更多的辉煌甚至奇迹!2019,看我们的!

未来组大力支持现代农业生物技术发展

得益于我国对农业发展的重视,近年来现代农业生物技术的市场规模逐渐扩大。为增强北京大学现代农学院和中国农业科学院的深入交流合作,进一步推进现代农业生物技术的发展,2018年12月29日,第三届北京大学-中国农业科学院现代农业生物技术研讨会在北京香山饭店盛大召开。中国农业科学院蔬菜花卉研究所、中国农业科学院作物科学研究所以及北京大学现代农学院共同主办了此次会议,武汉未来组也参与其中,和农业生物技术的科研工作人员一起研讨和交流现代农业生物技术的最新研究成果和发展趋势,推动相关实验室的技术交流与项目合作。

会议由北京大学现代农学院院长邓兴旺院士及中国农业科学院深圳农业基因组研究所黄三文所长分别致开幕词,表达了对此次会议对推进现代农业生物技术良性发展、对中国农业经济做出贡献的期望。随后,由中国农业科学院万建民院士实验室、黄三文所长实验室、北京大学生命科学学院李磊研究员实验室等十多名成员展示了现代农业植物学科各领域的成果和动态,共商现代农业发展的应用前景。

第三代测序技术在高重复、高杂合作物基因组的组装上有明显的优势,搭载Bionano光学图谱、Hi-C染色体构象技术等能够组装到染色体水平。仅2018年就已有小麦、花生、苜蓿、大豆、棉花、高粱、水稻、甘蔗等在第三代测序技术的助力下发表在一系列国际著名期刊上,未来组参与的玉米Mo17文章更是见刊Nature Genetics。此外,杨博士更分享了未来组在实验、超算研发上的最新成果,引起与会代表的广泛关注。最后,万建民院士作总结陈词,肯定了此次会议对于现代农业生物技术与育种前沿进展的积极作用,并殷切希望会议能够切实有效的推动相关实验室的技术交流与项目合作。

武汉未来组拥有PacBio、Oxford Nanopore、MGISEQ、BioNano光学图谱及Hi-C染色体构象捕获等技术和平台,同时在华为云、天河二号及阿里云上搭建高性能集群用于生信分析,为高等院校和科研院所提供动植物基因组、全长转录组、表观基因组、微生物基因组、宏基因组和结构变异检测等领域的科研服务,已完成了数百个三代测序科研项目,合作发表了一系列高质量的三代技术文章。未来组致力于打造世界领先的三代测序基因组中心,在承诺高标准交付指标的同时将进一步大幅压缩项目服务周期,为合作伙伴提供完善的基因测序分析服务。

辞旧迎新贺岁篇|走出非洲,人类基因组丢了10%?

人类基因组约3Gb,也就是30亿个碱基,如果将所有碱基排印成书,那么厚度将超过100米[1]。自从1977年测序技术诞生以来,人们已经推开了生命的奥秘之门,如今,又将好奇的目光投向人类自身。地球46亿年的漫长岁月,已有35亿年的生命史,而人的出现才几百万年。怎样定义人?人类是从地球孕育而来吗?人可以永生吗?人的终极演化形态是怎样的?也许有一天,这一切都可以从人类基因组中找到答案。

许多年以后,面对曾经科幻片[2]里才有的万能医疗舱,人类一定会想起他们第一次宣布HGP启动的1986年。

生命之书卷帙浩繁

——测序技术敲开人类基因组大门

1990年,在经过长达四年的争论和筹划后,人类基因组计划(HGP)终于获批启动,计划15年内完成绘制分析,投入资金30亿美元。

2000年,国际人类基因组测序联盟与Celera公司联合发布了基于全基因组鸟枪发测序的人类基因组草图,在2001年成果分别见刊Nature和Science杂志[3-4],发现人类基因数目仅3-3.5万个左右。值得一提的是,中国作为六个参与国家中唯一的发展中国家,测定3116Mb的序列,即完成了人类基因组的1%,精度达到了99.99%[5]。问题是,常染色质序列覆盖度只有90%,且序列之间存在近15万个空缺,导致了早期建立的很多基因模型是错误的。

2003年,中、美、英、德、日、法六国宣布比预期提前了两年完成了人类基因组序列图并于2004年发表在Nature上,进一步压缩人类编码蛋白的基因到2-2.5万个,精度达99.999%[6]。相较于2001年,常染色质的空缺只有341个,在这前后,研究者们也陆续将性染色体注解出来。

2005年,我国参与度达10%的人类单体型图谱问世[7]。

2006年,基因含量最多、解码难度最大的1号染色体登上Nature[8],标志着HGP的传奇乐章画上了休止符。

探索奥秘从未止步

——第二代测序掀起测序行业革命

2007年全球第一个白种人基因组图谱的公布标志着个体基因组时代的来临[9]。很快,深圳华大基因研究院就骄傲的宣布:第一个亚洲人基因组图谱“炎黄一号”发表于Nature[11],覆盖了36×的深度,拿到了一千一百七十七亿碱基对,比对了NCBI人类相关基因组,短reads序列达到99.97%覆盖率,而且根据参考的基因组,研究人员利用唯一的mapped reads获得了一个92%亚洲个体基因组的高质量序列集合。同时研究人员从中识别出了大约300万个SNPs,其中13.6%在dbSNP数据库中没有出现过,基因型分析证明这些SNP具有高精确性和一致性。研究人员还将这些序列与另外两个个体基因组(J. D. Watson and J. C. Venter)进行了比较,证明了第二代测序技术在个人基因组方面的应用潜力[12]。得益于第二代测序技术的高通量,整个项目不过一年时间,耗资1000万人民币!这项里程碑式的成果对中国以至整个亚洲人的治病基因、疾病预测等研究都有着非同寻常的意义。接着,第一张女性个人基因组图谱、第一张非洲人基因组图谱也相继出炉。但是第二代测序技术读长比重复元件要短,而人类基因组中已知的重复序列和片段化的重复元件占了近一半,这就导致在拼接的时候难免遗漏很多重要的信息。

 2008年炎黄一号首张中国人基因组 图谱登 《Nature》封面

技术革新再创辉煌

——第三代测序助力人类精细图谱问世

第三代测序技术以单分子测序且读长超长著称,因无需PCR,所以几无测序偏好性,由于荧光基团并不是附着于碱基而是磷酸键之上,大大降低了测序过程中的三维阻力,再加上ZMW孔锁定荧光检测区域,使读长远超二代测序。

通过PacBio SMRT,未来组助力暨南大学粤港澳中枢神经再生研究院主导的亚洲人参考基因组“华夏一号”收录于Nature Communications[10]。

“华夏一号”基因组组装策略结合了PacBio SMRT单分子实时测序技术和BioNano光学图谱分析技术,从头组装得到2.93G基因组,Contig N50为8.3Mb,Scaffold N50为22Mb得到一个中国人个体的基因组接近完成图。

图2 相较已发布人类参考基因组,“华夏一号”的Contig N50有将近10倍的提高

研究者还发现PacBio数据可以轻松跨越从5’末端到3’-Poly A tail的完整转录本,从而准确鉴定异构体,并对可变剪接、融合基因、等位基因表达等进行精确分析。在对Illumina和PacBio的测序数据的覆盖率比较后发现PacBio数据不受GC含量高低的影响,所以可以覆盖到多Illumina数据覆盖不到的区域,所以在基因组组装上优势就很明显。

图3 a.PacBio数据对GC含量异常区域覆盖更均匀,b.PacBio覆盖到Illumina覆盖不到的区域

“华夏一号”的发布填补了中国人群的疾病研究缺少精细参考基因组的不足,并将推进临床和科研大数据应用的重要基础性工作,大力推动中国的遗传疾病研究与诊断的发展。

第三代测序技术不仅有PacBio,更有人类历史上首次实现的纳米级别、也是唯一一种通过电信号的波动进行测序的技术Oxford Nanopore Technology(ONT),如2018年Nature Biotechnology上就发布了使用ONT首次高精度解析人类Y染色体着丝粒的研究[13]。

开拓视野解码升级

——非裔泛基因组补充10%人类DNA

最新的GRCh38基因组只有875个gaps[14],虽则如此,研究者们的目光多是聚焦在单个人身上,这样无疑滞碍了混血群体的研究,例如非裔人群。

近期,有约翰斯·霍普金斯大学的研究者使用全基因组鸟枪法测序法深度测序了910个非洲人种,构建了人类参考基因组中缺失但却在这910个非洲人中共有的DNA序列集,并鉴定出非洲人泛基因组在参考基因组中缺失的区域,最后发现了125715个特异contigs相当于比人类参考基因组多出超过约10%的DNA。研究者揭示出其中387个contigs来自315个特异的蛋白编码基因,余者来自基因间区域。这一研究成果发布在Nature genetics[15]上。

在这份研究中,研究人员收集了来自910个非洲人后裔群体的基因组,横跨全球20个地区包含美国、中非和加勒比等地的CAAPA(美洲非裔群体哮症协会)成员,使用Fig.1图示步骤去除了污染及冗余的contigs,最后鉴定到了GRCh38基因组中缺失的296.5Mb共125715条新序列,并且研究者将其中1548条序列(4.4Mb)锚定到了GRCh38基因组上的特异位点上,平均每个个体包含了859条插入序列,其中有一条序列同时可以在六个个体中找到。1548条序列中的302条完整定位到了基因组中的位置并解决了剩下1246条序列插入末端的断点。最长的定位到的序列为79938bp,存在于在197个样本中,而最长的未定位到的序列为152806bp,存在于11个样本。所有定位到参考基因组上的序列中的387条与已知基因相交,48个特异基因在外显子上,另外267个基因属于内含子区域;其中315个基因含插入序列,其中292个被命名(非“假设”或无意义的鉴定)。研究组装出的contigs中的31354079个碱基可以比对到GRCh38基因组上(一致性≥80%),组装成单个基因组后可以匹配上60202871个碱基(一致性≥80%)。

另外,研究还将该研究中的125715个泛基因组contigs比对到未来组参与完成的华夏一号(HX1)基因组和韩国人基因组(KOREF1.0)上,发现有42207个contigs共120.7Mb可以比对到韩国人或华夏一号基因组上且一致性≥90%,覆盖度≥80%,优于对GRCh38的匹配度,其中一个区段的示例见表1和图4,这个发现表明生成GRCh38基因组的个体缺失了一部分序列。

表1 非裔泛基因组contigs和华夏一号及韩国人基因组的比较

图4 将非裔泛基因组和华夏一号、GRCh38基因比对

Shi et al等人于2016年组装的华夏一号基因组报道了12.8Mb的新DNA,研究者则发现华夏一号和该研究中生成的特异序列共享68.1Mb的DNA。总之,该研究发现,亚洲人泛基因组产生的序列中有296.5Mb相当于10%的基因组大小在标准人类参考基因组中是缺失的,这其中有120.7Mb可以在韩国人或者华夏一号基因组中找得到,间接表明这些DNA代表的基因区域在GRCh38基因组所代表的群体中于更近的时期丢失了或者十分罕见,也可以说明单个参考基因组不适宜基于群体的人类遗传学研究,将来或许会有更好的方法获取综合性的人类泛基因组,捕获所有人类中的DNA。

随着“中国十万人基因组计划”、“地球生物基因组计划”的相继问世,人类仍在组学研究的大潮中寻找属于自己的那朵浪花,现有的成果距离揭示人类的奥秘还有很长的路要走。武汉未来组有幸也成为了一名弄潮儿,由未来组发起的“个人参考基因组服务计划”、“华夏万人结构变异计划”正在如火如荼的进行,并且进展顺利。人的智慧无穷尽,探索的脚步永不停,总有一天,人们只需要带着自己的基因图谱去看医生,扫描一下数据就可以直达病灶,然后躺进万能的医疗舱,出来的时候百病全消……

辞旧岁,迎新年,在这里,组学君默默祝祷,期望每一个善良的人都平安喜乐,百病不生。在新的一年,未来组将创造更多的成绩回馈社会,回馈组学领域,也祝愿每一位科研工作者硕果累累,万事如意!

已发表精细人类基因组图谱[10,16]

2018年NCBI上收录的人类基因组组装版本[17]

参考文献

[1]http://jiyongqing.blogchina.com/2427017.html

[2]《第五元素》、《极乐空间》、《普罗米修斯》等好莱坞科幻影片中均出现过能够复原生命或者治疗人类疾病的医疗舱。

[3]International Human Genome Sequencing Consortium. Initial sequencing and analysis of the human genome. Nature 409, 860–921 (2001).

[4]Venter, J. C. et al. Te sequence of the human genome. Science 291,1304–1351 (2001).

[5]骆建新, 郑崛村, 马用信, et al. 人类基因组计划与后基因组时代[J]. 中国生物工程杂志, 2003, 23(11):87-94.

[6]Finishing the euchromatic sequence of the human genome[J]. Nature:931-945.

[7]A haplotype map of the human genome : Article : Nature[J]. Nature, 2005.

[8]Gregory S G , Barlow K F , Mclay K E , et al. Corrigendum: The DNA sequence and biological annotation of human chromosome1[J]. Nature, 2006, 441(7091):315-321.

[9]高媛. 后基因组时代的生物信息学发展[J]. 中国科技信息, 2009(10):225-226.

[10]L. Shi, et al., Long-read sequencing and de novo assembly of a Chinese genome. Nature Communications (2016)

[11]The diploid genome sequence of an Asian individual[J]. Nature.

[12]https://m.antpedia.com/news/49844.html

[13]Jain M, Olsen H E, Turner D J, et al. Linear assembly of a human centromere on the Y chromosome[J]. Nature biotechnology, 2018.

[14]Schneider, V. A. et al. Evaluation of GRCh38 and de novo haploid genome assemblies demonstrates the enduring quality of the reference assembly. Genome Res. 27, 849–864 (2017)

[15]Sherman, R. M. at al. Assembly of a pan-genome from deep sequencing of 910 humans of African descent. Nature Genetics.51, pages30–35 (2019)

[16]De novo assembly and phasing of a Korean human genome. Nature 538,243–247 (13 October 2016) doi:10.1038/nature20098

[17]https://www.ncbi.nlm.nih.gov/assembly/organism/9606/latest/

【年末精选】当转录组遇上三代测序

每一项科学研究都是为了解决科学问题,那么当转录组研究遇上三代长读长测序技术,又能讲述怎样有趣的科学故事呢?

蜂鸟如何实现高效的能量转换?
15 February 2018, GigaScience

蜂鸟是唯一一类需要通过持续飞行获取花蜜的鸟类,其中的红喉蜂鸟,其在飞行中的高效率能量代谢几乎可与脊椎动物相匹敌。蜂鸟利用摄取的花蜜来为飞行提供能量,在这个过程中,蜂鸟体内流动的糖分是不飞行的哺乳动物体内的55倍。但糖类并不是唯一的能量来源,在长时间的飞行过程中,蜂鸟会选择消耗储存的脂肪来为飞行加油。正如蜂鸟体内的糖代谢非常快一样,在需要的时候,从膳食糖中建立脂肪储备也是非常迅速的。

研究者经PacBio SMRT测序技术对蜂鸟独特的代谢机制进行研究,仅针对蜂鸟特定组织肝脏,进行高覆盖度测序分析,结合最新生信分析方法,通过比较转录组手段,确定了蜂鸟脂肪合成通路中的序列差异和进化情况,解析蜂鸟独特代谢机制。

研究者利用OrthoMCL对红喉蜂鸟119,292个高质量序列和5种鸟类(安氏蜂鸟、烟囱刺尾雨燕、原鸡、斑胸草雀、虎皮鹦鹉)、人以及密西西比鳄进行同源分析。并对与安氏蜂鸟和红喉蜂鸟共有的同源序列进行GO注释。在红喉蜂鸟中确定的与代谢相关的1,444个直系同源序列,有236个(16.3%)是蜂鸟特有的,其中大多数基因都与初级代谢过程相关,在红喉蜂鸟初级代谢中占比最高且特有的是脂代谢过程。

对红喉蜂鸟、安氏蜂鸟、原鸡、烟囱刺尾雨燕、人、密西西比鳄中参与肝脏脂肪合成通路中的8种关键酶的氨基酸进行比较分析,发现蜂鸟通路中关键酶相关序列差异性较高,表明蜂鸟肝脏脂肪合成途径发生了功能适应性进化。研究者在文章中指出,经PacBio测序获得的全长转录本数据,不需要比对,不需要组装,直接获得基因isoforms转录组图谱,如本研究中确定的最长序列是脂肪通路中的acetyl-coA carboxylase 1,分析数据读长超过了7Kb,能覆盖编码区域,同时,Iso-Seq获得的转录组数据结合其他技术,可进一步用于后续代谢等相关研究。

空心莲子草叶甲为什么会专性采食

02 February 2018, Scientific Reports

空心莲子草是原产于南美的苋科植物,在二十世纪30年代进入中国并迅速成为入侵物种,对当地的生态系统造成了严重破坏。空心莲子草叶甲是空心莲子草的专性天敌,作为生物防治手段而被引入。这种叶甲不仅对空心莲子草有很高的专一性,其环境适应性也较强。

来自山西农业大学的研究者应用PacBio Iso-Seq技术,首次完成对叶甲的四个生长阶段(卵、幼虫、蛹、成虫)的转录组测序,并基于PacBio SMRT数据,做了进一步的全长转录组标准分析,重构了28,982 条转录本,鉴定了145个可变剪接事件;27,318条简单重复序列;经TransDecoder鉴定获得24,040个ORF,其中有16,205个完整的ORF;预测得到4,198 个lncRNA。同时,研究者还用多个数据库对空心莲子草叶甲基因进行了注释。长读长测序数据保证了转录本鉴定及基因注释的准确性。

这项对于叶甲的全长转录组研究,获得了较完整的叶甲转录本集合,并对转录组进行了较完整的鉴定和注释。尽管这篇文章并未明确定位与叶甲专性采食及其环境适应能力相关的基因,但也为进一步揭开谜底奠定了分子基础,同时也为其他昆虫和生态系统之间的互作研究提供了新的思路。

卡本内苏维浓凭什么在红酒界称王?

22 February 2018,bioRxiv

卡本内苏维浓又名赤霞珠,是最为人熟知、原生于法国的酿酒葡萄品种,在世界范围内广泛分布,其果粒小、果皮厚、出汁量少,含有极高浓度的酚类物质和单宁,使得酿造出的卡本内苏维浓葡萄酒拥有最深邃神秘的酒色和口感。

美国加州戴维斯大学葡萄栽培与环境学系的研究人员基于PacBio Sequel平台的全长cDNA测序提供了葡萄浆果成熟期间的综合性的全长转录本信息,同时结合二代测序数据,完善了Cabernet Sauvignon的基因注释,同时指出Cabernet Sauvignon成熟期的基因表达有异于其他葡萄,这或许正是她独特的魅力的成因。

为了研究Cabernet Sauvignon葡萄有别于其他栽培品种的独特基因,研究者将Cabernet Sauvignon葡萄中的55,886个已注释的转录本与PN40024的CDS区、Corvina葡萄和Tannat葡萄的转录本进行比较分析。研究发现Cabernet Sauvignon葡萄中的独特Isoforms有585个,对应于549个基因,这些基因参与了葡萄生长和浆果成熟的各种细胞过程和代谢过程。

通过GO富集分析发现Cabernet Sauvignon葡萄中有两个生物学过程较为显著——“细胞氨代谢过程”和“氧化还原过程”。在“细胞氨代谢过程”中的两个苯丙氨酸解氨酶基因(PALs;P0148F.500780.A、P0148F.500740.A)在葡萄成熟期间均有表达,且在成熟后其表达上调。在“氧化还原过程”中研究者推测二氢黄酮-3-羟化酶(F3H;P0007F.293800.A)起代表性作用,在葡萄成熟前到成熟、成熟到成熟后的阶段中该酶的表达明显上调。PAL和F3H在类苯基丙烷和类黄酮的生物合成过程中发挥作用,该过程在葡萄浆果中生产多酚类物质。与此类似,其他Cabernet Sauvignon葡萄的一些特异性基因在浆果成熟期间发生差异表达(65个转录本),说明他们参与了葡萄成熟过程。研究者推测是这些基因造就了Cabernet Sauvignon葡萄的独特性质。

尽管这一年三代测序在转录组方面的研究硕果累累,但是篇幅有限,今天组学君就和大家侃到这里吧~

三代全长转录组测序技术为研究者提供了一个可以全面观察物种转录组动态变化的机会——无需拼接,直接获得转录本全长,可获得更多被二代短读长数据遗漏的novel 基因及isoforms,更真实地反映转录组全貌,这将为转录组学研究带来更多新的机遇。武汉未来组配备三代PacBio及Nanopore测序仪,平均下机读长15-20Kb,月均产出高达18-20Tb,拥有丰富的全长转录组研究项目经验。全长转录组研究,未来组是您的不二之选。

2018三代转录组文献汇总

参考文献:1. Workman R E , Myrka A M , Tseng E , et al. Single molecule, full-length transcript sequencing provides insight into the extreme metabolism of ruby-throated hummingbird Archilochus colubris[J]. GigaScience, 2018.2. Jia D, Wang Y, Liu Y, et al. SMRT sequencing of full-length transcriptome of flea beetle Agasicles hygrophila (Selman and Vogt)[J]. Scientific reports, 2018, 8(1): 2197.3. Minio A, Massonnet M, Vondras A, et al.Isoform-scale annotation and expression profiling of the Cabernet Sauvignon transcriptome using single-molecule sequencing of full-length cDNA[J]. bioRxiv,2018: 269530.

【2018年末精选】值得一看的三代基因组文章(动物篇)

动物基因组一直以来都是组学研究领域的热门,目前动物基因组大小数据库(Animal Genome Size Databse)中已经收录了超过6000种有记载的动物,小到如咖啡短体线虫只有0.02pg,约合19.56Mb,而该数据库记录的维多利亚肺鱼基因组达到了近130G,两者相差6600多倍[1]

 图1 已记录的生物基因组大小范围[1]

随着测序技术的飞速发展,近年来越来越丰富的动物基因组研究极大地推动了人们对于人类起源、物种演化、医学、病虫害防治及濒危动物的保护等方面的认知及研究。2018年,运用三代长读长测序技术完成的动物基因组研究也是成果丰硕,逾40个高质量动物基因组被解析。以下组学君精选几篇高分文章,和您一起探讨动物基因组的奥秘~

  蝾螈基因组[2] 

——低深度三代测序组装完成的超大型基因组,揭示蝾螈断肢再生的秘密

24 January 2018,Nature

1月24日,Nature在线发表美西钝口螈(Ambystoma mexicanum)(~32Gb)基因组组装结果,是迄今组装完成的最大的基因组。研究中利用了三代PacBio测序技术及Bionano光学图谱技术,同时开发了新算法MARVEL,实现了利用低深度三代测序数据(32× PacBio数据)完成对超大型动物基因组的组装。

美西钝口螈基因组中重复序列高达18.6Gb,其中LTR和LINE是最主要的类别,其中不少长度超过10kb,并且组装出的97%的contigs都以LTR元件结尾。通过重复元件的相对形成时间分析得知:美西钝口螈基因组经历了持续时间很长的转座子活跃期,随后发生了近期持续性爆发式的重复序列扩张,大规模的重复序列扩张让美西钝口螈拥有如此庞大的基因组。

HoxA基因在肢体的近远轴(proximal-to-distal)发育中发挥重要作用,并且在断肢再生过程中会被重新活化。本研究中美西钝口螈的HoxA基因位点在单个contig上,含有明显的重复区域,比人类和蛙类的该基因大3.5倍,可能是由于该基因簇中在HoxA3和HoxA4之间存在一段170kb的扩张。

蝾螈的断肢再生功能具有非常重要的临床研究意义,此次美西钝口螈基因组的完成,与以往的单纯转录组数据相比,为研究提供了更为完整的参考信息。

 人类基因组[3] 
——里程碑:首个Nanopore测序完成的人类基因组,即将开启人类基因组完成图时代

29 January 2018, Nature Biotechnology

1月29日,Nature Biotechnology在线发表基于Nanopore超长读长组装人类基因组的研究论文。研究结果显示:低覆盖深度测序(~30×普通nanopore reads+ ~5× ultra-long reads)即能将基因组Contig N50组装到6.4Mb,填补了参考基因组(GRCh38)中12个gap,是单一测序手段得到的迄今最连续的人类的基因组。研究人员通过Nanopore MinION测序平台获得的ultra-long reads,最长读长达到了882kb。基于最先进的测序方法分析人类基因组中先前难以攻克的复杂区域,例如评估人类染色体端粒长度;完整地组装出6号染色体上的MHC区域(位于单个contig上)等,这是MHC首次在二倍体人类基因组中被准确地定向。此次Nanopore测序组装人类基因组研究论文的发表,对新测序技术的推广应用和更连续的人类参考基因组在临床医学研究中的应用意义深远。 

  高等猿基因组[4] 
——三代基因组de novo组装,揭示人类与猿的基因组结构差异

08 June 2018, Science

尽管近年来人们在类人猿和人类基因组的测序组装中做了很多努力,但我们对结构差异的理解,特别是对人类谱系特异性的理解,还远远不够。在以往的研究中存在两个基本问题:一是在类人猿基因组中存在相当大的杂合性;二是高质量的人类基因组常常被用来指导非人类基因组的组装,包括序列的顺序和方向,甚至是基因的注释。这造成了其他非人类基因组的“人类化”,结果导致很难发现在这些物种之间的结构变异和转录本差异。

为了解决这个问题,美国华盛顿大学Eichler研究组使用PacBio SMRT长读长测序技术及光学图谱技术,同时结合全长转录组测序辅助基因注释,生成了新的人类和类人猿基因组并着重分析了这些基因组中的结构变异事件。研究结果表明,与人的进化距离越远,结构变异的数目越多。

该研究还进一步研究了人与黑猩猩脑器官差异表达相关基因,研究表明,与黑猩猩相比,人特异性结构变异基因中与放射状胶质神经组细胞相关的基因表达下调。

这项研究充分体现了长读长测序在基因组de novo组装及完善基因组注释中的作用,不依赖于参考基因组的测序组装最大程度地保留了物种的特异性基因组信息,为研究近缘物种的演化及结构变异提供了有效方法。

 考拉基因组[5] 

——揭示考拉独特的“解毒”机制

02 July 2018, nature genetics

考拉又称树袋熊,主要栖息地是澳大利亚东部的桉树林区。近年来,由于栖息地减少、疾病传播等原因,考拉面临着极大的生存挑战,澳大利亚采取了一系列措施保护这一珍稀物种。

澳大利亚博物馆研究所等机构的研究人员和英国、美国等国同行在Nature genetics杂志上发表关于考拉全基因组的研究论文,该研究运用三代PacBio测序技术和二代Illumina测序技术,获得了高质量的考拉基因组,发现了超过2.6万个基因,进一步分析揭示出与考拉饮食习惯、免疫系统等有关的基因调控机制。

研究人员发现考拉对桉树叶片的解毒能力可能是与细胞色素P 450基因家族的扩张有关,这种被称为“细胞色素P450”的酶在生物代谢过程中扮演重要角色。关于犁鼻器和味觉感受器的基因家族扩张也使得考拉能够在众多桉树中找到次级代谢产物较少的叶子以供食用。考拉容易受到衣原体感染,为了保护刚出生的幼崽,考拉的乳汁中含有一种特殊蛋白质,能对抗包括衣原体在内的一系列细菌和真菌。

这一研究成果极大的促进了考拉生理、遗传学研究的系统性和科学性,同时对遏制考拉野生种群数量持续走低也有着积极意义。

  牛基因组[6]

—— Trio Binning方法突破单倍型基因组组装难题

22 Oct 2018, Nature Biotechnology


美国国家人类基因组研究所、Pacific Biosciences公司及阿德莱德大学等单位的研究人员开发了一种新技术,通过简单的方法即可实现从二倍体中组装出完整的单倍体基因组,这项新技术是基因组组装领域的重大突破,使研究人员能够鉴别从植物到动物等任何类型基因组中的复杂性,并获得比目前更为精确的参考基因组。该研究成果发表在10月22日的Nature Biotechnology杂志上,一经发布便引起广泛关注。

复杂的等位基因变异阻碍了二倍体基因组中单倍型序列的组装,为此研究者开发了trio binning方法,通过在组装前解析等位基因变异来简化单倍型的组装。与以往的方法恰恰相反,该方法的有效性随着杂合度的增加而提高。Trio binning首先使用来自两个亲本基因组的高精度短读长数据将子代的长读长序列划分为单倍型特异性的集合,然后每个单倍型独立组装,形成一个完整的二倍体重建。这一新方法运用了读长更长的PacBio测序技术,首次给出了每条染色体的真正基因组序列,获得迄今为止最高质量的两个牛亚种基因组。将该方法应用到拟南芥和人类家系中,同样获得了理想的分型效果。

该论文的作者之一John L Williams教授说,trio binning技术已经彻底改变了他们以前的技术,他说:“到目前为止,基因组序列都是由遗传差异最小的个体构建的。Trio binning技术标志着技术能力的重大进步,对研究和医学应用具有广泛的意义。” 并指出Trio binning技术将有助于建立更准确的个人基因组变异信息,这将提高基因测试的准确性,并有助于获得个人独特DNA序列,从而在其临床治疗上提供帮助。

 伊蚊基因组[7] 

——高质量伊蚊基因组,带来蚊虫防治新思路

14 November 2018, Nature

埃及伊蚊是传播包括登革热、黄热病、寨卡病毒以及切昆贡亚热在内的可怕疾病的载体。由于缺乏高质量的参考基因组,在了解蚊子生物学特性及蚊子防治等方面依然困难重重。

由洛克菲勒大学领导的国际研究团队结合PacBio测序、Bionano光学图谱、Hi-C分析、10x Genomics linked-read测序以及Illumina的短读长测序多种手段大大升级了埃及伊蚊的参考基因组并进行了重新注释,通过锚定物理图谱和细胞遗传图谱,研究者在伊蚊基因组中鉴定出了两倍于已知的、引导蚊子以人类为目标、定点产卵的化学感应离子受体。

研究还发现了有助于深入了解雄性性别决定位点的大小和组成并揭示杀虫剂耐药性关联基因之间的拷贝数变异。使用高分辨率的定量性状位点和群体遗传分析,研究者定位到了新的与登革热传染能力和拟除虫菊酯抗性相关的候选基因。

长读长测序技术及光学图谱、染色体构象捕获等技术的应用为人们展示了更精细的物种基因组结构,使人们得以更进一步地探索生命的奥秘,了解物种独特的特性及功能背后的基因密码。武汉未来组专注三代测序技术的研发与应用多年,依托于自身的PacBio、Nanopore、Bionano光学图谱及MGISEQ等平台,已合作发表多篇三代测序基因组文章。选择未来组,我们将为您提供高质量、高效率的三代基因组测序分析服务。

2018已发表三代动物基因组(PacBio)

2018已发表三代动物基因组(Nanopore)

参考文献:

[1] http://www.genomesize.com/statistics.php?stats=entire#stats_top

[2] Sergej Nowoshilow, Siegfried Schloissnig, Ji-Feng Fei , et al. The axolotl genome and the evolution of key tissue formation regulators.Nature.2018

[3] Jain M, Koren S, Quick J, et al. Nanopore sequencing andassembly of a human genome with ultra-long reads[J]. bioRxiv, 2017: 128835.

[4] Kronenberg, Z.N. et al. High-resolution comparative analysis of great ape genomes. Science 360(2018).

[5] Johnson, R.N. et al. Adaptation and conservation insights from the koala genome. Nature Genetics 50, 1102-1111 (2018).

[6] Koren, S. et al. De novo assembly of haplotype-resolved genomes with trio binning. Nature Biotechnology (2018).

[7] Matthews B J, Dudchenko O, Kingan S B, et al. Improved reference genome of Aedes aegypti informs arbovirus vector control . [J].Nature,2018

non-B DNA影响链聚合速度和错误率?PacBio告诉你!

non-B DNA是什么?

说起non-B DNA,是不是会有点陌生?不要紧,组学君从DNA的分子构象说起。依据脱氧核糖核酸的序列、超螺旋的程度以及方向还有碱基上的化学修饰、溶液状态等,我们可以在自然界的生物细胞中发现三种DNA构象:A-DNA、B-DNA与Z-DNA。理论上的B构象是细胞中理想、均一的结构,而实际的B-DNA从微观角度看各个碱基对也是有所不同的,平均每个螺旋周含有10个nt;A-DNA每一转螺旋的碱基对更多,因此螺旋相对更短更紧密;Z-DNA则是左旋型态,因而能够与B-DNA结合,由DNA单链上的嘌呤和嘧啶交替排列形成。

non-B DNA形成的序列模体包含Z-DNA、G4链体(一种稳定的非标准DNA二级结构,由四个鸟嘌呤层叠排列组成,每个鸟嘌呤由Hoogsteen氢键连接[1])、A相重复序列、颠倒重复序列、镜像重复序列、正向重复序列及其相应的子集(见图1A)。

图1A Non-B DNA模体类型

non-B DNA——是造物主的馈赠,也是诅咒

何出此言呢?non-B DNA可以调控很多细胞中的生理进程,越来越多的研究证据也表明,其在很多与疾病相关的细胞通路中起到关键作用,例如G4结构已成为颇具吸引力的抗癌治疗靶点。但同时,它也会影响DNA合成并导致基因组不稳定,在癌症细胞的染色体重排中尤其常见,单个位点在体外或者活体转移的实验中显示:non-B DNA构象会抑制原核以及真核生物DNA的聚合酶,导致复制叉的停顿或者中止。千人基因组计划中的致病基因和遗传变异数据还证实non-B DNA构象中点突变的发生几率相对要高一些。

首次在基因组范围解析non-BDNA影响聚合速度和错误率的研究[2]

近日来自宾夕法尼亚州立大学的WilfriedGuiblet等人使用PacBio单分子实时测序技术(SMRT)来评估DNA聚合速度和聚合酶错误受non-B DNA的影响,并使用特殊设计的噬菌体phi29聚合酶来记录脉冲间隔持续时间(IPDs)以测定主要的核苷酸序列(见图1B),两个荧光脉冲之间的时间对应于两个连续的核苷酸的结合时间。他们还使用IPDs作为衡量聚合作用动力学的参数,借助SMRT测序技术在基因组尺度上对non-B DNA模体类型的聚合动力学和错误进行直接、实时的监测。研究还将高突变和非突变的non-B DNA模体进行对比来分析SMRT聚合动力学和测序错误率之间的关系来探索测序设备和活体细胞中聚合作用的潜在关联。近日,该项研究成果发表于《Genome Research》,让组学君和大家分享一下吧!

 研究概览

Non-B DNA模体影响聚合动力学

研究者选取了包含non-B DNA数据库和注释的STRs(短串联重复序列)共92个可能形成non-B DNA的不同模体类型(见图1A),并且构建了包含各类模体的基因组视窗,每个视窗自中心取样±50bp(多数小于100bp)且排除重叠视窗。在对照组中,研究人员还构建了100bp的无模体窗口作为基因组背景,即假定的B-DNA。研究使用之前使用SMRT测序的69×深度的人类基因组数据,用其中100个单核苷酸分辨率的IPD填充每个包含各类模体和无任何模体的窗口——因每一条链都作为SMRT测序中的模板单独使用,因此上述对参考链和互补链的操作都是独立的。对于每个模体类型,研究都进行了中心比对并聚合IPD曲线以生成每一条链的IPD曲线分布(见图1B)。

图1B SMRT测序时每一个subread记录了每一个核苷酸的IPDs

为了评估non-B模体是否呈现不同于B-DNA的聚合动力学模式,研究使用了Interval-Wise Testing(IWT)——一种新的功能数据分析(FDA)方法,并识别基因组碱基或IPD曲线分布在包含模体和无模体的100bp窗口之间显著不同的区间(图2)。而研究者在多个non-B-DNA模体中和/或周围发现了聚合动力学的改变。紧接着,研究者描述了对参考链的操作结果(总共包含2916328个含各种模体和2524489个无任何模体的窗口)(见图2A-D的上部分以及E)以及反向互补的结果作为生物学重复(见图2A-D的下部分)。

图2 non-B DNA 的聚合动力学

双线证据支持G4模体阻碍聚合酶进程的推断。首先,G4模体的存在降低了聚合速度。与无模体窗口相比,包含G4模体的窗口在其中心显示相当高的IPDs。更重要的是,包含了所有模体类型的IPD分布形状保持一致(见图2A)。其次,G4模体的测序深度低于无模体窗口(86%的无模体测序深度要高些)(见图2A),表明G4模体的存在会在一定程度上阻碍聚合,导致较少的reads覆盖。相反,富含胞嘧啶的互补链(图2A)以及参考链(其反向互补链上的G4s已被注释)(图2E)上的聚合显示速度加快,测序深度也略微有增加(92%无模体测序深度要高些)。同时,研究者也观察到其他的non-B DNA模体如A相重复序列、颠倒重复序列、镜像重复序列以及Z-DNA都显著地改变了聚合动力,使聚合变快(IPD更低)或者变慢(IPD更高)。但是和G4模体不一样,它们对两条测序链的聚合动力影响是相似的(见图2E)。

此外,研究还发现STR以长度和序列相关的方式改变聚合动力(图2B-E),这些变量影响non-B DNA结构的类型和稳定性,还形成滑移结构。对于≥2-nt重复单元的STR,聚合动力的变化是周期性的,具有与重复单元的长度匹配的周期(以碱基为单位)。这种模体在三核苷酸STR中尤其明显,其与某些神经系统疾病相关位点的扩展有关联(图2B-D),如(CGG)n、(CAG)n和(GAA)n分别与脆性X综合征、亨廷顿病和弗里德里希运动失调有关。能够形成发夹结构的STR表现出最显著的聚合减速和周期性(图2B、C、E)。相反,形成H-DNA的STR,包括(GAA)n,则会加速聚合(图2D、E)。

碱基修饰或核苷酸组成都不容易解释non-BDNA模体聚合动力学的变化。为什么这么说呢?首先,大多数non-B DNA模体的IPD模型在扩增的DNA中仍可清楚地检测到,这表明变化不是由原始模板DNA中的碱基修饰引起的。另一方面,单核苷酸或二核苷酸组成的成分拟合只解释了无模体窗口间平均IPD变异的相对小的部分。此外,大多数模体窗口的平均IPDs与上述拟合预测的结果有显著差异(图2F)。因此,核苷酸组成远远不能解释non-B DNA模体的IPD变化。 尤其是,仅凭G4+模体中鸟嘌呤的存在不能解释在这些位点观察到的所有聚合减速。

G4链体相关联的聚合动力学和生物物理学特征

为了检测non-B DNA结构能否通过实验形成预期的模体,研究者分析了人类基因组中最常见的10种G4模体来考察聚合动力学与生物物理特性的关系。根据圆二色光谱(CD)和天然聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)分析,所有10个模体在低钾浓度下迅速形成稳定的四链体,表明尽管具有不同的分子(分子内或分子间)和链方向(平行或逆平行),它们仍具有形成这种结构的高倾向性。用分子内G4s的回归分析发现,平均IPD与δε(P<2×10-16,R2=32.3%)呈显著正相关(见图3),而平均IPD与熔融温度(P<2×10-16,R2=5.7%)呈显著正相关(通过光吸收获取热稳定性和结构变性的程度)。 由此可以判断,聚合速度减慢与G4形成的生物物理特性相关,也充分说明模体是在SMRT测序反应中形成了G4结构,因此也就能够适配PacBio测序设备60×100nm的测序孔。

图3 G4链体稳定性和聚合动力的关系

Non-B DNA模体影响测序错误率

为了检查phi29聚合酶的准确性在合成基因组中不同类型的non-B DNA模体时是否受影响,研究还比较了模体区域和无模体区域中SMRT测序的错误率,研究者使用与上述IPD分析相同的69×人类基因组计算错误率(见表1)。由于存在STRs分型不准确和重复位点的序列错配的可能性,研究聚焦于基因组非重复部分参考链上存在的六种非STR模体序列类型。研究者仅关注模体本身(而不是包含100bp模体的窗口)并且鉴别出在数量和长度上匹配到六种模体上的无模体区域作为对照,且排除序列和参考基因组之间固定差异的包含模体和无模体的区域,并计算测序错误率作为含模体或无模体区域的核苷酸总数中的变异比例(相对于hg19),甚至包括单个read支持的错误。最后,研究给出新合成链的错误结果(新合成链使用了用non-B DNA模体注释的模板链)。

研究观察到了G4模体对SMRT错误率的强烈影响。当模板链上存在G4s时,新合成的链上的错配显著增加。当模板编码G4+尤其是G4-模体时,SMRT测序中常见的插入错误被抑制。与G4模体相比,Z-DNA显示出低水平的错配和缺失,但插入错误有所增加。综上所述,三种SMRT测序错误率在non-B模体和和无模体区域之间有所不同,在G4-模体处错配和缺失显著增加。接下来,研究又测试了SMRT中错配型错误率是否可以用序列成分来解释。在无模体窗口的SMRT错误率中,只有4.1%的可变性可以用单核苷酸组成来解释。在四种核苷酸中,鸟嘌呤含量与SMRT错误相关性最强,其数量的增加会导致SMRT错误率升高。二核苷酸组成的回归分析也解释了无模体窗口中SMRT错误率相当小比例的可变性(R2=5.6%)。此外,大多数类型的模体(除了A相重复序列外)的SMRT错误率都显著不同于由这种成分回归分析预测的错误率。因此,核苷酸组成不足以解释无模体窗口和non-B DNA模体的SMRT错误率变化。尤其要指出的是,G4+模体中高浓度的鸟嘌呤也无法解释在这些位点观察到的SMRT错误率的增加。

表1 SMRT测序时non-B DNA的错误率

SMRT错误率增加与聚合酶减速尤其是non-B DNA相关

研究者接下来分析了SMRT错误率是否与聚合速度有关。研究关注对SMRT误率影响最强烈的G4+和G4-模体并使用无模体窗口进行对照。研究者拟合了SMRT错配型错误率作为核苷酸组成校正的平均IPD值函数的回归。该模型还考虑了三组区域——G4+模体、G4-模体和无模体窗口——总体R2为35.4%(见图4)。研究发现SMRT错配率与模体窗口中冗余平均IPDs呈显著正线性关系(斜率=0.11,P=2.9×10_10)。有趣的是,G4+的回归线斜率显著高于无模体窗口,而G4-的回归线斜率与无模体窗口相似。由此可以得出结论,SMRT错配型错误与聚合酶减速正相关,且这种关联在G4+中特别显著。

图3 和动力学变化相关的错误

聚合酶速度与突变的产生

众所周知,突变率的发生在基因组中是不均一的,而导致区域变异的机制还没有完全被探明。关于SMRT技术的测序错误的结果以及之前的体外聚合酶研究证实了non-B DNA对噬菌体、原核和真核聚合酶合成DNA的影响,同时也提出了一个有趣的疑问:通过过聚合酶减速,这些模体也会影响活体的突变率吗?除了环境影响之外,突变是聚合酶错误和细胞缺乏修复的结果。研究假设突变主要由聚合酶错误引起,然后对比在人和猩猩分化水平以及人种内多样性水平下高突变率和低突变率的G4+模体之间的SMRT错误率和平均IPD。通过模拟,研究证明小的等位基因突变频率极不可能由Illumina测序在G4模体上增加的错误率引起。因此,研究使用的分化和多样性数据理应是高准确性的。高度分化(或多样化)的G4+模体具有较高的IPD值。此外,高度分化(或多样化)的G4+模体比低分化(或低多样化)的G4+模体具有更高的错误率。据此,研究人员现发分化(或多样化)程度与聚合速度呈负相关,而与SMRT测序错误正相关,表明鸟嘌呤四链体结构不仅影响测序错误率,还会影响活体的种系突变。

本研究首次使用单分子实时(SMRT)技术同时检测DNA聚合动力学和人基因组测序的误差。研究者发现,non-B和B-DNA的聚合速度之间有明显的差异:在G4模体时减速,在致病性的串联重复时呈周期性波动。通过聚合动力学分析,研究预测和验证了一个新的non-B DNA模体的形成,并且证实了一些non-B模体会影响测序错误率例如G-四链体的存在会增加错误率)且测序错误与聚合酶减速正相关。最后,研究证明了高度分化的G4模体具有明显的聚合减慢现象和较高的测序错误率,表明测序错误和种突变具有相似的产生机制。

 

惊!神秘人现身,知名大咖C位不保!

听说今天来了个神秘人,

抢了组学君的C位不说,

还把气氛搞得很嗨!

真是岂有此理!

举报!

就是那个带红帽子的白胡子老头!

错了错了,是这个!

他驾着驯鹿空降未来组,捎来了一车礼物,房间都摆不下了!每个小伙伴都有呢!

而且,他还偷偷调查了12月过生日的小伙伴,亲手送礼物、切蛋糕,还强行要求站C位合影留念!

无奈大家都很喜欢他,看看大合影,还是C位!(组学君:好吧,看在送了组学君很多礼物的份上,今天的C位就让给你了,毕竟拿人手短么~嘤嘤嘤~)

这个老头临走还留了句话:

嚯嚯嚯!我明年还会回来的!

组学君:……

(我需要召集更多勇士保住我……的C位)

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Bionano联手GrandOmics,共同推动基因组病诊断技术前沿

2018年12月21日,美国纳斯达克上市公司Bionano Genomics(以下简称“Bionano”)CEO Erik Holmlin一行应邀来访北京希望组生物科技有限公司(以下简称“希望组”)。希望组CEO汪德鹏、COO余国亮带领研发团队热情接待,并细致地向来宾介绍了公司发展历程、三代测序平台及Bionano Saphyr平台的运行情况。双方重点围绕技术前沿发展、应用开发合作等话题进行了深度沟通,一起展望长读长技术对基因组病诊断、肿瘤诊断、宏基因组研究、动植物基因组研究等领域革命性推动作用,并对未来进一步深度合作表达了极大的兴趣!

早在2017年,希望组便开发了基于Bionano Saphyr平台的面肩肱型肌营养不良症(FSHD)检测项目,突破传统检测技术遇到的瓶颈,快速、精准地检测FSHD,从而开启了更完整、更真实的长片段DNA技术应用于基因组病诊断的新篇章。

本次Bionano公司高层来访期间,希望组研发团队介绍了近期基于Bionano Saphyr平台的应用开发所取得的进展,同时重点介绍了构建“dbSV-人类基因组结构变异数据库”项目。该项目将综合采用Bionano Saphyr、ONT PromethION、PacBio Sequel等长读长平台,快速、高效、低成本地检测人类基因组结构变异,弥补目前人类基因组结构变异数据库的不足,并结合人工智能技术实现对基因组长读长数据的精准解读,充分挖掘数据价值,这将对人类基因组学研究、基因组病诊断、精准医疗应用范围拓展等产生重要的科学和临床价值。

Bionano CEO Erik表示:感谢希望组对Bionano公司的信任和认可,也非常认可希望组推动构建的dbSV数据库。他强调,建立dbSV数据库是一项非常困难而且具有挑战性的工作,同时也是一个前瞻性的决定。目前,Bionano研发团队已对Saphyr平台的样品制备、数据分析和结果可视化进行了全面升级,研究人员能够更简便、更直观、更全面地了解所发生的基因组结构变异,即使在高度复杂的疾病样本中也不例外。Bionano Saphyr光学图谱成像技术是有效识别基因组结构变异的重要平台。

未来双方将继续深入交流、紧密合作,充分发挥各自的优势,共同致力于基因组结构变异的检测,探索更多复杂疾病的致病机制,推动医学检测进入一个新的阶段,真正为世界各地的患者和家庭带来福音和希望!

希望组 CEO 汪德鹏表示:感谢Bionano公司研发的世界领先的单分子光学图谱技术平台。引进了Bionano Saphyr平台以后,我们不仅完成了大量的动植物基因组组装项目,极大的提高了动植物基因组组装的完整度;我们还应用于“华夏一号”、“中华家系一号”等中国人的参考基因组构建项目中;今后,我们还将在高质量、大样本的中国人结构变异数据库(dbSV)中继续采用Bionano平台。继我们在全球第一次应用Bionano平台解决面肩肱型肌营养不良症(FSHD)的诊断难题之后,我们还将继续发挥平台的优势,在基因组病诊断、肿瘤诊断、辅助生殖诊断、宏基因组诊断等领域深度开发,希望能为患者提供更多的全新的解决方案。

关于Bionano Genomics公司

Bionano Genomics公司成立于2004年,总部位于美国圣地亚哥,是基因组图谱行业的领先企业。今年8月,Bionano成功IPO登陆纳斯达克并募集2,370万美元资金,致力于探索一种更好地全面了解基因组信息的方法。Bionano已经推出了基因组图谱绘制系统Irys和Saphyr系统。基因组图谱绘制系统可以为客户提供全基因组分析工具,揭示真实的基因组结构,使研究人员能够捕获数据中缺少的内容,以推进人类、植物和动物基因组研究,实现对人类基因组结构变异(SV)的全面探究,最大限度地改进目标物种的基因组组装。

关于希望组

北京希望组生物科技有限公司(Grandomics Biosciences Co.,Ltd.)成立于2014年,专注于第三代测序精准医学研究及诊断服务。公司是全球最大第三代测序基因组中心之一,配备了Bionano Saphyr、Nanopore、PacBio等不同类型的长读长技术平台,并将三代测序技术应用于人类疾病研究。同时,希望组搭建了适用于第三代测序技术的大容量、高性能计算平台,并与华为云合作,将数据分析流程整合到云计算平台,为全球客户提供优质的第三代测序计算和存储服务。目前,公司已完成上亿元A/B轮融资,在北京建设了2,300平米第三代测序中心,在武汉建设了4,500平米科研服务和医学检验实验室,先后荣获北京市专利试点、北京市新技术新产品(服务)等荣誉。希望组始终秉持“科学的边界、技术的极限、伦理的底线、人文的关怀”价值观,致力于让领先的技术推动基因组学的研究与应用,让生命充满希望!