从已发表paper中找找全长转录组研究套路

自2016年玉米和高粱全长转录组文章相继发表后,全长转录组测序分析方法开始被越来越多研究团队认可,开始不断被运用到多组学研究中。到了2017年,动植物领域全长转录组测序分析项目也开始陆续发表,除了3月份刚发表的矮牵牛全长转录组项目文章,未来组其他全长转录组项目文章也正在路上赶来。

组学君通过汇总已发表的全长转录组文章,总结了几点应用全长转录组研究的小套路,说不定你苦思不得其法的问题,能在这里获得一些灵感。

材料选择与处理

在构建基因集时,文章中通常选择不同组织不同发育阶段的样本,提取RNA,等摩尔混合为一组进行测序;如涉及到转录本差异的研究,根据研究目的设置对照组和处理组进行全长转录组测序分析,或不同发育阶段或不同组织分为不同组,进行全长转录组测序分析;为考虑成本,在对不同发育阶段或不同组织进行转录本差异分析时,会对样本加barcode,一定比例混合测序,降低文库成本,还有项目在实验时会对样本进行均一化处理,但是目前PacBio官方对均一化处理并无正式Protocol推荐。

作为基因组组装的辅助工具

目前很多已发表的三代基因组文章中都会运用全长转录组测序分析的优势来辅助基因组组装和注释,如在异源六倍体小麦基因组组装及注释中,研究者通过对小麦6个组织进行PacBio SMRT测序,获得全长转录本,对小麦组装基因组的基因预测和注释分析进行完善,确定了之前小麦基因集中缺失的,及未注释的上千个基因。

更丰富的转录本结构形式

因PacBio SMRT测序的长读长优势,能呈现转录本完整结构,最开始的全长转录组paper中多集中于呈现不同转录本结构形式,如可变剪接(AS)或可变聚腺苷酸化(APA)得到的丰富的新的转录本,以及挖掘新的LncRNA,比较典型的案例可以参考高粱全长转录组玉米全长转录组。近来的全长转录组文章不仅会花一些篇幅陈述新发现的转录本结构形式,还会结合科学问题挖掘转录本结构形式更深层次机制。

全长转录组Iso-Seq与RNA-Seq结合精确定量isoforms表达量

目前,转录组差异研究多集中在基因表达量差异研究,首先,基于Iso-Seq获得丰富准确的isoforms,再进行RNA-seq对isoforms表达量精确定量分析。这也是目前全长转录组运用到转录调控研究中的常规思路。

转录本差异与表达量差异研究相结合

如上述4所说,目前大部分转录组差异研究多集中在基因表达量差异研究,而忽视了转录本结构差异,在拟南芥ABA处理后的响应研究中发现,可变剪接事件的转录本结构变化作用可能高于基因表达,这也给转录组研究提供一些启发,转录组差异研究不能只关注基因表达量差异,也需要结合转录本结构差异进行更全面的研究。组学君建议在转录组差异研究中,结合转录本结构差异与表达量差异来进行,当然转录本结构差异研究首选未来组提供的长读长PacBio SMRT测序技术。

开发更快速更有效的分析方法

目前全长转录组分析工具尚不丰富,可从研究项目数据分析中,开发一些适用于其他项目特征的全长转录组的分析工具,不仅可以对项目数据“物尽其用”,还可以为其他研究者提供分析方法的参考。如在矮牵牛全长转录组测序分析中,研究者针对无参考基因组物种,基于Iso-Seq和RNA-Seq开发了HySeMaFi(hybrid sequencing and map finding),挖掘尽可能丰富的可变剪接形式,并对isoforms表达量进行精确定量分析。

组学君汇总了这些年已发表动植物全长转录组文章,供各位参考,如有遗漏,也请各位留言补充。

备注:疾病相关的转录组研究未在内

未来组最新Paper:冬虫夏草线粒体基因组及DNA甲基化修饰信息

近日,由湖南农业大学研究团队完成,未来组参与的冬虫夏草线粒体基因组项目文章见刊Frontiers in Microbiology。研究经PacBio SMRT测序技术,解析了冬虫夏草线粒体基因组完成图,并构建肉座菌目真菌系统进化分析,为冬虫夏草的分类地位提供了遗传学证据,同时,对线粒体基因组范围的DNA甲基化修饰进行分析,为目前首篇研究真菌线粒体基因组表观修饰的论文报道。

冬虫夏草(Ophiocordyceps sinensis)是冬虫夏草菌感染蝠蛾幼虫而形成的冬虫夏草菌子实体与僵虫菌核(幼虫尸体)构成的复合体,是中国传统名贵中药材,主要产于中国西藏高原等高寒地带和雪山草原。冬虫夏草线粒体基因组完成图的获得可对冬虫夏草的进化和系统分类进行深入分析,同时,在PacBio测序中,带有甲基化修饰的DNA碱基会出现荧光脉冲信号的延迟,可直接被识别检测到,因此从测序原始数据中直接获得冬虫夏草线粒体基因组的甲基化信息,也为肉座菌目真菌线粒体基因组的表观修饰的进一步研究提供参考。

研究方法

采集冬虫夏草子实体进行DNA提取;质检合格后,构建20kb文库,上机PacBio RS II测序,P6C4,8个SMRT cell;将过滤后数据与已公布的201个真菌线粒体基因组比对,提取属于线粒体的序列,经HGAP组装;后进行线粒体基因组注释、甲基化和进化分析。

研究结果

  1. 经组装,得到成环的冬虫夏草线粒体基因组57,539bp,含有14 个保守蛋白编码基因(PCGs), 1个rps3, 27个 tRNAs和 2个 rRNA,其中AT含量占69.8%。另外,冬虫夏草线粒体基因组中内含子54个,与肉座菌目其他真菌相比数量最多,分析还确定了73个ORFs(Figure 1 和Table 1)。

Figure 1冬虫夏草线粒体基因组圈图

Table 1 肉座菌目真菌线粒体基因组特征对比

  1. 基于14个与OXPHOS系统相关的保守PCGs做ML系统进化树分析,分类结果确定了冬虫夏草在虫草科中的分类地位,再次更正了之前经冬虫夏草形态学分类到Cordycepssp. 的错误(Figure 2)。

Figure 2基于冬虫夏草线粒体基因组中14个PCGs ML系统进化树

  1. 基于19个肉座菌目真菌rps3基因构建的进化关系,发现与上述基于PCGs的系统进化关系有差别,在对肉座菌目中rps3基因的选择压力分析中,加入了外群P. nordicum,发现肉座菌目真菌受正选择压力(Figure 3),rps3的36个序列位点受正选择压力(dN/dS >1),其中16个序列位点具统计显著性(P ≥0.95)(Table 2)。

Figure 3基于肉座菌目真菌rps3基因构建系统进化树

Table 2肉座菌目真菌rps3基因对数似然函数值及参数评估

  1. 在冬虫夏草线粒体基因组中,确定了1604个修饰位点(正向链783个,反向链821个),平均modQV scor(特定修饰信息的一致性)为24.68,平均覆盖度在96×左右(Figure 4)。在其中确定了28个4mC(0.13%)和10个6mA(0.017%)的修饰位点,大部分6mA和4mC分布在基因间区或内含子区,仅有3个DNA甲基化分布在编码区nad2,nad4L,nad5(Table 3),研究推断其甲基化信息可能与冬虫夏草在寒冷及低PO2的高海拔环境生长适应性相关。

Figure 4 冬虫夏草线粒体基因组中DNA修饰

Table 3 冬虫夏草线粒体基因组的6mA和4mC信息 

PacBio SMRT测序技术的长读长有效解决了冬虫夏草的线粒体基因组中高AT区域或高重复区域难题,得到线粒体基因组完成图,准确定义了基因组特征和进化地位,这一优势也已延伸到科研项目中解决大基因组的复杂区域难题;同时,PacBio测序原始数据可直接用来检测基因组中DNA修饰信息,可让研究者从表观修饰信息角度挖掘与环境适应性相关的分子机制。

参考文献

Kang X, Hu L, Shen P, et al. SMRT sequencing revealed mitogenome characteristics and mitogenome-wide DNA modification pattern inOphiocordyceps sinensis[J]. Frontiers in Microbiology, 2017, 8: 1422.

王凯组发布新算法RepeatHMM,剑指DNA重复类“暗物质”诱发遗传病

微卫星序列扩张,尤其是三核苷酸重复扩张,会引起脆性X综合征,弗里德赖希运动失调,肌强直性营养不良和脆性XE神经缺陷等40多种遗传性疾病,这些统称为三核苷酸重复性疾病TRDs。

如,ATXN3基因通常含有13-41个CAG重复,而ATXN3基因上CAG重复超过55个后具有致病性,会引起脊髓小脑性共济失调3型疾病SCA3。除此,不同的致病性CAG重复次数,会引起其他多种多聚谷氨酰胺疾病。

TRDs的严重性和TRDs综合征发作年龄与三核苷酸重复序列大小密切相关,重复单元数量超过一定阈值后,重复单元数量越高,疾病症状将更严重,综合征发作年龄将越提前,严重的会诱发遗传早现现象。因此,对三核苷酸的重复单元准确检测不仅将提高科研人员对TRDs及其中分子机制的理解,同时,对TRDs临床诊断,风险评估和预后都尤为重要。

微卫星序列重复单元检测方法

目前,在对微卫星序列重复次数检测的方法中,通常会先对基因组中靶序列进行PCR扩增,再经毛细管电泳等技术手段鉴定,但都费时费力,且通量低;Sanger测序又对长的重复序列很无奈;而二代测序读长太短,很难测通整个重复片段区域,当然还无法覆盖高GC含量区域。

第三代高通量测序技术,如PacBio SMRT测序和Oxford Nanopore测序,可覆盖10K及以上的序列,因为是单分子测序,对GC含量异常区域没有偏好性,可解决上述检测手段在重复片段区域的瓶颈。然而由于三代测序单reads的准确度有限,如PacBio的三代测序数据的单read的碱基错误率平均达到了15%,现有的算法并不能有效地检测出基于三代的长读长reads的微卫星序列重复单元。

重复单元鉴定新工具RepeatHMM

希望组&未来组创始人之一的王凯教授,带领实验室开发了一套基于三代测序的repeat region鉴定的算法RepeatHMM,解决了目前微卫星序列重复单元鉴定的技术瓶颈,该算法不仅能识别出repeat region,同时能够鉴别重复单元,进而计算出重复单元数量和重复片段的大小。这为更进一步认识基因组、鉴定因repeat region变化导致的遗传病等,奠定了算法基础。

RepeatHMM流程如Fig. 1,先找出目标区域的起始位置;然后对覆盖该区域的长reads进行切割mapping,以提高mapping的准确率;三是要保证重复区域上下游的一些特异性片段,作为标记mapping上;四是针对三代测序的错误进行纠正;五是基于隐马可夫模型进行重复片段估算;六是基于peak calling算法,进行位点的重复片段分布估算。

RepeatHMM获取地址:

https://github.com/WGLab/RepeatHMM

RepeatHMM评估方法

模拟数据1评估:

100套不同覆盖深度PacBio模拟数据,设置ATN1正常和致病性等位基因 CAG重复次数。

模拟数据2评估:

根据真实PCR扩增情况模拟100套不同覆盖深度的PCR扩增数据。

SCA3患者数据评估:

经PacBIo Sequel对25名参与者(20名SCA3患者,5名健康对照者)ATXN3基因的扩增子进行测序。

SCA10患者数据评估:

基于SCA10的3个患者原始数据,评估RepeatHMM在更为复杂重复类型的检测性能。

NA12878不同平台数据评估:

基于NA12878的三个平台(PacBio SMRT ~50X,Oxford Nanopore ~30X,Illumina ~300X)及正常表型HX1(PacBio SMRT , ~100X)。

RepeatHMM评估结果

1.结果显示RepeatHMM和 BAMself工具在覆盖度从10至50时,正常等位基因的RMSE(评估预估重复次数和真实重复次数间差异)降低, RepeatHMM和 BAMself工具在覆盖度从10到200时,致病性等位基因的RMSE降低,但是RepeatHMM的提升更加明显,覆盖度超过200时,RepeatHMM的致病性等位基因RMSE降低至2.0以下。与BAMself相比,在大多数正常等位基因和致病性等位基因中,RepeatHMM能得到更准确的重复次数(Figure 2a和c)。

2.基于PCR扩增的模拟数据与1的结果高度一致,但,对于致病性等位基因的RMSE如要和1在一个水平,则需要更高覆盖度的数据(Figure 2b和d)。

3.基于Sequel的SCA3原始数据,RepeatHMM的预测结果非常好,与毛细管电泳检测的重复次数基本0或1,而且与BAMself和TRhist相比,特别是在病原等位基因上,预测性更好。另外, RepeatCCS(基于CCS序列的RepeatHMM)虽预测性比BAMself 和TRhist要好,但其预测错误率比RepeatHMM高很多(Figure 3)。

4.SCA10数据评估,发现BAMself 和TRhist不能准确检出3个患者的ATXN3致病等位基因的重复单元数量,而RepeatHMM评估的重复大小更接近于凝胶电泳的预测结果(Table 1)。

  1. NA12878不同平台数据评估显示,以Illumina数据为标准,两个长读长平台预测与Illumina预测高度一致,表明具不同数据错误类型的测序平台数据可在RepeatHMM上进行分析(Figure 5)

基于上述全方位的评估,从模拟数据到真实TRDs患者数据,从简单重复类型的SCA3患者数据到更为复杂重复类型的SCA10患者数据,再从不同测序平台进行评估,都显示出RepeatHMM的分析优势。

相对常规方法,RepeatHMM中HMM 对重复序列区域检测相当灵活,适用于不同重复单元类型,不同重复单元长度;其次,可将不同测序平台数据经不同参数整合到HMM中;再次,RepeatHMM运算非常高效,如在对1名患者的ATXN3的原始数据(~21,000X)分析时,通常需要2-12min。

希望组&未来组发布的分析新工具RepeatHMM,具使用灵活、高效等特征,结合长读长测序数据,将能对微卫星序列重复单元数量进行快速便捷的鉴定,可以广泛应用于微卫星重复性疾病的研究中。

作为三代测序精准医疗公司,希望组未来会将这款工具的应用延伸到临床诊断中,不断突破现有测序技术所面临的瓶颈和挑战,切实提高遗传病诊断准确度和检出率,降低出生缺陷和罕见病的发生率。

参考文献

Liu Q, Zhang P, Wang D, et al. Interrogating the “unsequenceable” genomic trinucleotide repeat disorders by long-read sequencing[J]. Genome Medicine,2017, 9:65.

从Science野生二粒小麦基因组到小麦基因组大家族

普通小麦基因组高达17Gb,为异源六倍体AABBDD类型,且含有80%的重复序列,使得小麦基因组解密历程艰辛。研究学者面对困难,勇敢直前,一步一步地绘出不同小麦基因组图谱。近期,研究者再次添砖加瓦,于Science发表野生二粒小麦基因组研究成果。

解析野生二粒小麦基因组AABB

现代的六倍体小麦AABBDD Triticum aestivum是经异源四倍体野生二粒小麦Triticum turgidum(WEW)驯化为有脱粒特性的现代二粒小麦(DEW)后,与二倍体DD Aegilops tauschii杂交形成。野生二粒小麦基因组的解析将可以从另外一个角度了解小麦的进化。

基因组组装

WEW基因组在测序策略上,构建了不同大小插入片段文库,经176x 深度的Illumina测序组装,组装10.1G基因组,Contig N50 57.37k,经遗传图谱和Hi-C进一步验证组装,最后得到Scaffold N50=6.96M,将基因组锚定到染色体上,然而,其中不确定的Scaffolds有0.4Gb,Scaffolds间gaps有~1.5Gb,经BUSCO评估,基因组组装完整度在98.4%。

注释及进化分析

WEW的2个亚基因组的同源性分析,发现其中72.3%同源基因对,同源基因对的表达模式和表达水平相似。另外少量同源基因对只在一个亚基因组中表达,功能富集分析表明,亚基因组调控的基因表达可能与小麦品种相关。

在WEW基因组注释中,预测了82.2%转座子序列,大多数转座子元件为长末端重复反转录转座子LTR-RTs,不同类型的转座子在2套亚基因组中含量相似。而大部分全长LTR-RTs在150W年前发生扩张。Ty3和未分类的转座子在A与B亚基因组中类似,而Ty1/copia发生在500W年前,这与A和B亚基因组杂交的预计时间相一致。

为了进一步研究不落粒的驯化性状,对Zavitan和Svevo杂交,发现了调控脆性BR表型的基因区域,其中包括WEW染色体3A和3B上的2个位点(15.5Mb,32.5 Mb),确定了小麦基因(chromosome-3A: TtBtr1-A和 TtBtr2-A;chromosome-3B: TtBtr1-B 和TtBtr2-B)。在栽培种中TtBtr1等位基因在编码区发生突变,而在栽培种和野生种中,TtBtr2未发生编码区突变,推断2个基因中的突变是互补的,获得R栽培表型。

通过外显子测序,驯化和野生二粒小麦显著分离成2个亚群,野生二粒小麦分布以色列、叙利亚、黎巴嫩和土耳其地区,栽培二粒小麦分布印度洋、地中海、东欧和高加索地区,与野生小麦相比,栽培小麦的多样性下降。

小麦基因组解密历程艰辛

面包小麦即普通小麦(Triticum aestivum)是世界上种植面积广泛的农作物,是全球重要的粮食作物。普通小麦基因组不仅规模大(高达17Gb),而且基因组复杂,为异源六倍体AABBDD类型,含有3套亚基因组,亚基因组间相似性高,无法定位基因来自哪套染色体,且含有80%的重复序列,这些都使得小麦基因组解密历程艰辛。

异源六倍体小麦基因组的常规测序策略是通过构建BAC文库,结合鸟枪法测序;在材料选择上,会选择从小麦的二倍体供体开始基因组测序,为下一步深入解析六倍体小麦基因组及驯化、重要农艺性状等研究做参考。

下面组学君盘点了已发表小麦基因组的几个典型。

2012年11月,Nature,Triticum aestivum,AABBDD

利物浦大学、加州大学戴维斯分校等 9所研究机构合作对小麦基因组进行了测序。研究中经454测序平台对普通小麦栽培品种Chinese Spring基因组进行测序组装,并与其二倍体祖先基因组比较,确定了9万多个基因。分析发现普通小麦在多倍化和驯化过程中,基因组中有大量基因家族丢失和基因片段冗余。其中发生扩张的基因家族大部分参与能量采集、代谢和生长等过程,与作物产量相关。进一步,研究确定了小麦基因与特定性状之间的关联,这些都为加速栽培小麦育种提供遗传资源。

2013年3月,Nature,Triticum urartu,AA

中科院遗传与发育生物学研究所领衔完成了小麦A基因组的测序工作。小麦A基因组的祖先物种二倍体野生一粒小麦,即乌拉尔图小麦,经91X的 Illumina HiSeq 2000测序,组装得到Contig N50=3.42 kb,Scaffold N50=63.69 kb,基因组序列注释结果表明,66.88%的基因组为重复元件,同时发现一些重要农艺性状基因和分子标记。

2013年3月,Nature,Aegilops tauschii,DD

中国农业科学院作物科学研究所牵头完成对小麦D基因组测序,经90X不同插入片段的短读长测序,组装的Scaffolds覆盖了83.4%基因组信息,其中65.9%为转座子,经RNA-seq对确定了43,150编码蛋白基因,其中71.1%经遗传图谱锚定到染色体上。基因组组装注释分析,揭示了与抗病性、生物胁迫和籽粒品质相关的基因家族发生扩张。

2014年7月,Science,Triticum aestivum,AABBDD

中国农业科学院作物科学研究所牵头完成对小麦D基因组测序,经90X不同插入片段的短读长测序,组装的Scaffolds覆盖了83.4%基因组信息,其中65.9%为转座子,经RNA-seq对确定了43,150编码蛋白基因,其中71.1%经遗传图谱锚定到染色体上。基因组组装注释分析,揭示了与抗病性、生物胁迫和籽粒品质相关的基因家族发生扩张。

未来展望

依据测序技术不断发展,基因组的解析有了更多选择。在2017年PAG会议中,中国农业科学院作物科学研究所报道了最新的节节麦DD基因组进展,通过结合DeNovoMagicTM2 Nrgene,Illumina X10,PacBio和10xGenomics数据,组装结果不断提升。并通过Cytogenetic技术, CEGMA, BUSCO分析,与BAC序列比对评估组装结果,均表明组装结果有很大提升。

目前PacBioSMRT长读长测序技术是复杂基因组测序组装的利器,组学君认为这一优势将能在异源六倍体小麦基因组及二倍体四倍体小麦基因组的深入解密中发挥优势,填补基因组中gaps,挖掘更多小麦基因组家族中的“暗物质”。等待各位研究学者的持续解密!未来组愿助力各位在小麦及其他作物研究中的工作。

参考文献

1.Avni R, Nave M, Barad O, et al. Wild emmer genome architecture and diversity elucidate wheat evolution and domestication[J]. Science, 2017, 357(6346): 93-97.

2.Brenchley R, Spannagl M, Pfeifer M, et al.Analysis of the bread wheat genome using whole-genome shotgun sequencing[J].Nature, 2012, 491(7426): 705-710.

3.Ling H Q, Zhao S, Liu D, et al. Draft genome ofthe wheat A-genome progenitor Triticumurartu[J]. Nature, 2013, 496(7443): 87-90.

4.Jia J, Zhao S, Kong X, et al. Aegilops tauschii draft genome sequence reveals a gene repertoire for wheat adaptation[J]. Nature, 2013, 496(7443):91-95.

5.International Wheat Genome Sequencing Consortium. A chromosome-based draft sequence of the hexaploid bread wheat (Triticum aestivum) genome[J]. Science,2014, 345(6194): 1251788.

6.Marcussen T, Sandve S R, Heier L, et al. Ancient hybridizations among the ancestral genomes of bread wheat[J]. Science, 2014,345(6194): 1250092.

7.Pfeifer M, Kugler K G, Sandve S R, et al. Genome interplay in the grain transcriptome of hexaploid bread wheat[J]. Science,2014, 345(6194): 1250091.

8.Choulet F, Alberti A, Theil S, et al. Structural and functional partitioning of bread wheat chromosome 3B[J]. Science, 2014,345(6194): 1249721.

未来组引进BioNano Saphyr平台

继未来组2016年搭建了Sequel平台,2017年,未来组基因组测序中心又添强将——通量更高的BioNano Saphyr平台,与Sequel组基因组学研究的“精兵强将CP”,未来组基因组测序中心将不仅为基因组学合作伙伴提供优质的服务,更会进一步压缩项目周期。

物理图谱是基于DNA中一些可识别的界标(如限制性酶切位点、基因等)在 DNA上的物理位置而构建的图谱。如要获得完整的物理图谱,基于BAC(Bacterial Artificial Chromosome,细菌人工染色体)、YAC(Yeast Artificial Chromosome,酵母人工染色体)等构建的物理图谱,通常耗时耗力,随着测序技术的发展,更便捷更高通量的BioNano单分子长片段基因图谱技术出现了,BioNano图谱技术利用酶切对DNA上进行特异性的标记,再经单分子高分辨率荧光成像,得到酶切位点的图谱,在基因组组装和结构变异等基因组学研究中应用广泛。

2017年6月,Bionano Genomics公司创始人到访希望组&未来组北京实验中心,与北京总部管理层进行了深入交流,为大家讲解了BioNano Genomics公司创始契机,发展历程以及在未来精准医疗中前景展望,引发大家热烈讨论。

在未来组以往的BioNano基因组项目研究中,一直与BioNano Genomics公司团队保持着密切沟通,此次BioNano Saphyr平台的搭建,是双方战略合作的一个新的开始。

作为第三代测序服务公司,未来组基于第三代PacBio SMRT测序优势完成了大量复杂基因组组装项目,同时借助BioNano  Irys测序平台辅助,极大的提升了复杂基因组的组装指标。

未来组动植物基因组BioNano项目案例

2017年,未来组基因组测序中心搭建的最新平台BioNano Saphyr,是在第二代Irys系统的基础上进行升级优化,速度、通量、数据处理能力大幅度提升,工作流程大量简化,减少了人工操作时间。未来组将借助BioNano Saphyr通量和速度的提升,继续深耕基因组学领域,同时也会将结构变异分析中的科研成果转化到希望组遗传病诊断、癌症研究等应用中。

未来,双方将在基因组学及临床医学中进一步合作,为未来精准医疗中的原始数据精准性提供坚实基础,肩负社会责任感,共同发展,推动行业进步。

关于Binano Genomics

Bionano Genomics公司基于其专利芯片技术开发的高通量单分子层的基因组长距离分析方法,于2014年商业化为第二代的单分子基因组Irys分析平台, 2017年又推出第三代的通量更高的单分子基因组Saphyr分析平台, 目前平台系统遍布全球五大洲。

关于未来组

未来组深耕基因组学科研领域,完成了大量复杂基因组项目,2016年搭建未来组基因组测序中心,已拥有Sequel、BioNano Saphyr及Hi-C等技术平台,借助BioNano Saphyr通量和速度的提升,助力科学家完成更多复杂基因组组装和结构变异的分析。

Nature丨向日葵基因组发表

近日~3.5Gb的向日葵基因组组装结果在线发表于Nature主刊,借助于高质量的基因组序列信息,结合重测序和转录组测序数据,研究者解析了向日葵的花期和产油量性状,重构菊类植物进化史,详情见下文分享。

向日葵在进化或植物发育的研究中都是非常重要的模式生物,然而由于其基因组相当复杂,含有大量高度相似的重复序列,导致其基因组组装充满挑战。此次项目中,研究者借助PacBio SMRT测序技术迎难而上,对向日葵自交系XRQ进行PacBio测序,综合407个Cells的测序数据,组装得到13,957个Contigs,结合高密度遗传图谱信息,将Contigs定位到染色体上,锚定了97%的序列信息。分析发现,其中有超过3/4的基因组序列是长末端重复反转录转座子LTR-RTs。

在获得向日葵高质量基因组序列信息后,研究者进一步分析向日葵特殊的进化地位及重要的农艺性状。

比较基因组研究

为评估菊类植物的演化史,研究者选择了菊类植物中的代表物种生菜、朝鲜蓟、咖啡和外群物种葡萄与向日葵基因组来进行比较分析。

分析发现向日葵,生菜,朝鲜蓟都经历了一次全基因组三倍化事件WGT,时间大概在38-50Ma,而向日葵的进化历史更加复杂,在29Ma前发生了特异性的全基因组复制WGD-2,加上17次染色体的裂变和126次染色体的融合,最终才形成向日葵现在的17条染色体组型(Fig.1)。

Fig.1菊类植物从AEKs的进化途径

向日葵农艺性状研究

在对向日葵两个重要育种性状,花期和油脂代谢的研究中,研究者通过整合旁系同源序列信息、转录组基因表达及重测序中的遗传变异信息确定了相关候选基因。

通过参考拟南芥基因网络,在向日葵基因组中确定了与花期相关的270个同源基因(Fig.2a)。接下来,研究者对来源于72个亲本材料的480个F1代杂交种进行了全基因组关联分析(GWAS), 共定位了与花期相关的35个基因组区域。同时发现现代向日葵品种的花期调控基因在最近的全基因组复制过程中也发生了加倍,导致同一个花期基因在基因组中出现了两次(Fig.2b)。

Fig.2向日葵花期性状整合分析

a.向日葵花期调控基因网络关系

b.向日葵栽培品种的花期基因在染色体上的分布

在向日葵油脂性状研究中,研究者重构了向日葵油脂合成的代谢通路,确定了其中12个通路中429个候选基因(Fig.3a),同时,明确了32个基因区域的46个油脂代谢相关基因,与之前确定的QTLs相一致(Fig.3b)。其中,有9个油脂代谢相关基因在高油和低油品系中分化明显,分别在驯化后的育种过程中受到了人为选择。值得一提的是,其中PAP2基因家族的一个成员基因,前人研究发现该基因参与脂肪酸前体的合成,并能调控微藻的油脂含量,在本研究中发现该基因在种子里大量表达,且与种子的油脂含量密切相关。该基因可作为向日葵含量性状改良的重要候选基因(Fig.3f)。

Fig.3 向日葵油脂代谢整合分析
a.全基因组代谢网络 b.油脂代谢通路共表达通路 c.与QTLs共定位基因网络
d.甘油二酯和三酰甘油合成通路中基因 e.亚油酸脂合成通路中基因
f.参与脂肪酸前体合成的PAP2家族中候选基因的聚类树

向日葵高质量参考基因组的获得及相关遗传资源材料的丰富加强了以向日葵为模式的进化生态研究,同时,也加速了其育种进程,为基因组学研究提供了参考思路。

未来组作为三代测序基因组中心,已于2016年搭建了 Sequel、BioNano及Hi-C等技术平台。借助平台的搭建,未来组将会为更多合作伙伴提供专业优质的服务。

参考文献

BadouinH, Gouzy J, Grassa C J, et al. The sunflower genome provides insights into oil metabolism,flowering and Asterid evolution [J]. Nature. 2017.

Nature Communications丨基于三代测序的水稻近完成图

Nature Communication在线发表–基于三代测序的水稻近完成图

5月4日,中国科学院遗传所与发育生物学研究所与四川农业大学研究团队合作于Nature Communications 在线发表了迄今最高质量的水稻参考基因组(蜀恢R498)。未来组作为三代测序技术的领导者,在R498水稻基因组项目中,为研究团队提供PacBio SMRT测序。研究人员基于PacBio SMRT测序技术,结合遗传图谱、fosmid文库测序和BioNano光学图谱对R498基因组测序组装,最终组装出的基因组大小为390.3Mb,Super-Contig数目仅为17个,组装质量明显优于之前组装的日本晴(Nippponbare)和模式植物拟南芥基因组,成为目前所有高等植物中组装质量最高的基因组。

基因组组装质量高

1.基因组完整度和连续性好
经PacBio SMRT测序技术,结合遗传图谱、fosmid文库测序和BioNano光学图谱,R498基因组(2n=2x=24)组装出17条Super-Contig,基因组中有7条染色体被完整组装出,另外5条染色体各由2个Super-Contig组成,存在的gap区域主要是着丝粒或串联重复结构。
经检测评估,R498每条染色体末端都组装完整,仅存在5个gap;而Nip仅有4条染色体两端组装出端粒,且存在239个gap。两者相比较,R498的组装结果比Nip更完整和连续。(Tab.1)

Tab.1 R498和Nip组装连续性和完整度比较

2.组装出了完整的细胞器基因组
除核基因组之外,研究者还组装出了R498完整的线粒体序列。通过和Nip的线粒体基因组进行比较(Fig.1),发现Nip线粒体基因组中存在不少错误,可能是因为含有复杂的重复序列区域,其中有3个重复序列长度超过20kb。

3.组装质量评估
对R498基因组进行组装质量评估,发现其基因组覆盖率超过99%。结合二代短读长数据和RNA-Seq数据进行评估,结果显示其基因组单碱基错误率<0.0017%,大大低于对于人类及其它高质量的参考基因组(如Nip)来说所要求的标准:1/10000。

Fig.1 蜀恢(R498,橙色)和日本晴(NIP.,绿色)线粒体基因组比较

1.R498与Nip基因组间比较分析
通过基因组比较分析可以看出(Fig.2),两个基因组间在染色体水平上有很高的相似性,80.31%的R498基因组能比对到82.73% Nip基因组,但是在基因序列上存在2,548,071个SNP差异。并且研究人员还基于R498基因组的完整性,发现在R498与Nip基因组间存在大量结构变异,例如在6号染色体上存在一个大片段的倒位区域(Fig.2)。另外还对着丝粒、端粒、PVs、rDNA这些区域进行了对比。

Fig.2 R498与Nip.全基因组比较

2.19个水稻品系间的比较基因组学分析
对比R498与Nip的基因组,发现在其基因编码区存在大量的变异(Fig.3a)。同时,在与其他17个栽培水稻基因组比较后,发现水稻基因组中广泛存在不同的PAVs(Presence-absence variations)(Fig.3b)。PAV等结构变异往往与农艺性状表型密切相关,如果基于二代短Reads与参考基因组进行比对,这部分信息往往被遗漏。

Fig.3 a:R498和Nip间同源基因数量 b:水稻基因组PAVs比较

植物基因组因高杂合高重复序列而组装困难,借助PacBio长读长优势,结合BioNano光学图谱和Hi-C技术辅助组装,能够克服这些难题,覆盖端粒、着丝粒、重复序列等区域,大大提升组装指标,为解决后续重要功能基因挖掘和进化研究提供高质量的参考基因组。

未来组作为三代测序基因组中心,已于2016年搭建了 Sequel、BioNano及Hi-C等技术平台。借助平台的搭建,未来组将会为更多合作伙伴提供专业优质的服务。

参考文献

Du HL, Yu Y, Ma YF, et al. Sequencing and de novo assembly of a near complete indica rice genome[J]. Nature Communications, 2017.

未来组全国巡讲

未来组全国巡讲

基于三代测序的动植物基因组及转录组学最新研究进展

近年来,PacBio SMRT 技术因其长读长、无偏好性等优势逐步被广大研究人员所接受,应用日趋广泛,其在大型动植物基因组和全长转录组等方面的研究成果近期爆发性地产出,例如四倍体藜麦硅藻山羊等基因组发表在Nature、Nature Genetics,以及高粱玉米矮牵牛等数十篇全长转录组文献陆续见刊,不断指引着组学研究的潮流。

未来组作为三代测序服务供应商,长期致力于前沿组学研究技术的推广及应用,2016年已搭建三代测序中心,为合作伙伴提供专业和优质的服务。

2017年第二季度,未来组将进行全国巡讲,为相关领域研究人员带来“基于三代测序的动植物基因组及转录组学最新研究进展”,覆盖从课题思路,项目执行及文章撰写全过程,不论是创新点还是重难点,您都将从未来组巡讲中获得答案。

以下为巡讲详细信息:

区 域

单  位

地  点

时  间

华中

中国科学院水生生物研究所水生所标本馆506

4月18日
周二上午9:30

中国农业科学院油料作物研究所

油料所二楼会议室

4月18日
周二下午14:30

华中农业大学

华中农业大学植物科学技术学院主楼315A

4月19日
周三上午10:00

河南农业大学

一号楼二楼学术报告厅

4月20日
周四上午9:30

河南省农业科学院

综合楼八楼会议室

4月20日
周四下午15:00

华北

中国农业大学

玉米中心112会议室

4月24日
周一下午15:00

中国农业科学院生物技术研究所

生物所216会议室

4月25日
周二下午14:30

首都师范大学

理科楼418

4月25日
周二晚上19:00

北京市农林科学院

综合楼二楼会议室

4月26日
周三上午10:00

中国农业科学院北京畜牧兽医研究所

畜禽改良中心一楼视频会议室南109

4月26日
周三下午14:30

北京中医药大学

望京校区东12较

4月27日
周四上午9:30

北京林业大学

实验楼407

4月27日
周四下午14:30

中国林业科学研究院

新森保楼小会议室

4月28日
周五上午9:30

华东

上海辰山植物园辰山科研中心二楼报告厅5月3日
周三上午10:00

上海海洋大学

水产生命学院A211

5月3日
周三下午15:00

上海交通大学

农业与生物技术学院 3-101

5月4日
周四上午10:00

南京农业大学

生物技术楼A3003

5月5日
周五上午10:00

南京林业大学

生物技术大楼61002

5月5日
周五下午15:00

浙江大学农生环楼c栋912

5月8日
周一上午10:00

安徽农业大学

国重楼111室

5月10日
周三上午10:00

南昌大学

南昌大学理科生命大楼A429

5月11日
周四下午15:00

江西农业大学

拾禄楼4楼报告厅

5月12日
周五上午10:00

浙江农林大学

东湖校区智能实验楼二楼大会议室

5月17日
周三下午14:00
云南云南大学校本部西楼313

5月15日
周一下午14:00

中国科学院昆明分院

西南生物多样性实验室楼1-24

5月16日
周二上午9:30

中国科学院昆明植物研究所

种质资源库4025月16日
周二下午14:30

中国科学院昆明动物研究所

主楼3-27

5月17日
周三下午14:30

中国科学院昆明植物研究所南楼4楼会议室

5月18日
周四上午9:30

福建

福建农林大学

海峡联合研究院
基因组与生物技术研究中心
(下安实验1号楼)5楼报告厅

5月24日
周三下午14:30

厦门大学环境与生态学院金泉楼A 239 会议室

5月25日
周四下午14:30

未来组三代测序中心启动仪式

3月11日下午,希望组&未来组三代测序平台启动仪式在北京总部盛大举行。本次仪式可谓高朋满座,大咖云集。来自科研领域、医疗领域以及媒体界等几十位嘉宾出席了启动仪式,共同见证这一盛事。

本次启动仪式于北京时间3月11日14点,在希望组&未来组北京总部隆重拉开帷幕。活动邀请了热心肠道联合创始人热心肠先生–蓝灿辉先生作为嘉宾主持人。

图:蓝灿辉先生

图:王文礼先生

仪式开始,由中关村生命科学园总经理王文礼先生代表中关村生命科学园,向希望组&未来组三代测序平台启动仪式致辞。

王总表示现代生物技术和新医药产业被喻为新世纪永远成长的“钻石产业”,成为当今各国激烈竞争、势在必夺的战略制高点。希望组作为三代测序精准医疗公司入驻园区,已成功搭建了三代测序技术平台,必将推动生命园区的医疗创新步入新台阶,将为生命园区的发展注入更多的新鲜血液,将会带动整个园区在生物技术、基因检测领域谱写出新的新篇章。

随后PacBio创始人及CTO Stephen Turner先生风趣幽默的讲述了PacBio的创业历史以及Sequel的发展历程,并介绍了三代测序在科研和医学领域应用的广阔前景。

图:Stephen Turner先生

图:张涛先生

基因集团董事局主席张涛先生发表致辞,向希望组&未来组表示热烈祝贺,张总表示本次启动仪式是在测序发展史上的重要里程碑,不仅对希望组&未来组至关重要,对基因公司及PacBio公司也至关重要。基因公司作为希望组&未来组供应商,希望今后能继续为希望组&未来组提供更好的服务,为基因测序做出重要的贡献。

图:黄尚志教授

本次活动还邀请了北京协和医院医学遗传学教授,中国遗传病及罕见病领域的专家—黄尚志老师,黄老师提出目前仍有很多以往的检测技术无法解决的复杂序列问题,导致很多疾病无法在分子水平上得到明确的诊断。期待希望组&未来组团队能借助三代测序平台超长读长的优势填补这块技术空白。

图:汪德鹏先生

仪式最后,希望组&未来组CEO汪德鹏先生向在场嘉宾简单介绍了建立未来组及希望组的契机及历程,同时展示了所取得的重要进展:参与发表了“华夏一号”—中国第一个参考序列级别的黄种人基因组近完成图,并参与相关国家、国际标准的制定;建立了与包括道培医疗集团在内多家大型医院的三代测序精准医疗战略合作;开发了低覆盖深度全基因组三代测序检出结构变异的产品。并表示将不负众望,带领团队持续创新,并逐步将科研服务方面的领先优势迅速转化为极具临床价值的核心竞争力。

活动最后以PacBio公司亚太区总裁Ram Laxman 先生向希望组授牌—“三代测序遗传病检测公司”为尾声,启动仪式顺利结束。此次活动标志着希望组&未来组步入了一个新的阶段。

寄语:

继未来组3台Sequel测序仪正常运行数月后,希望组实验中心的3台Sequel测序仪也安装调试完成,并实现了稳定的高数据产出。这样6台PacBio Sequel测序仪已全数到位。超长的读长,平均读长达10kb以上,每天可产出超60G数据,月均产出可高达2T。标志着希望组&未来组成为迄今Sequel数据产出中心

3+3 Sequel已到位,三代测序中心

未来组 6台PacBio Sequel 测序仪已全数到位。
超长的读长,6倍的通量,
月均产出将高达2T

武汉未来组于2016年订购了6台最新PacBio Sequel测序仪,其中三台位于武汉研发中心,另外三台位于未来组北京实验室,现均已通过调试,正持续高通量产出。

测序仪是测序技术的核心武器,一个现代测序中心对测序仪机种和机型的选择,事关命运,靠的是理念与远见,调查与预测(《基因组学》,杨焕明)。

2016年,未来组在同行业火拼X10时,已出手引进了PacBio Sequel测序仪,并率先完成Sequel平台试剂升级和测试,目前正平稳运行,为各位客户保质保量产出数据,那ATGC谱写出的是耳边不断跳动的音符。

未来组基于PacBio SMRT测序平台,积累大量的大基因组组装经验和创新,解决了超大基因组组装、多倍体组装难题,通过搭建Sequel测序平台和天河2号快速组装平台,将会大幅度缩短项目交付周期。2017年,未来组期待与您一起制定基因组测序计划。