未来组三代测序实验及生信分析培训班火热来袭!

本次培训班邀请Science、NG一作科学家专程授课,详细的理论介绍与实际操作相结合,让你与世界经验最为丰富的三代测序实验员、分析师面对面!解决您在三代测序项目过程中遇到的问题,全面提升三代测序实验技能及生信分析水平,还有机会享受项目合作折扣、公司实习名额!

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软件算法感兴趣的老师同学报名参加!

培训优势

1、 专业的培训平台,一流的讲师团队。

2、 大量实操!方法阅读三遍不如上手操作一遍!

 参加本培训班你将收获

1、了解最前沿的三代测序技术进展及应用研究思路

2、从建库测序到数据处理全流程实操

3、掌握纳米孔测序技术原理、建库测序流程及数据处理方法

4、了解动植物基因组三代测序组装纠错策略、分析流程及常用生信工具

5、了解您的项目在未来组的运行过程

课程安排

注意事项
1.自带电脑

笔记本电脑配置要求Windows 7、8、10,CPU 2GHz以上,内存4Gb以上,有线网络端口可用。

2.请完成汇款后将您的汇款凭证扫描件或清晰照片发送至:

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3.报道通知

报名成功者,将会在8月9日18:00点之前收到会务组的邮件报道通知。如需申请经费可在NextOmics 微信后台回复“会议通知”或“培训通知”提前获取通知。

4.发票

2019年8月9日18:00前付款可在培训期间获取发票。

请务必准确填写报名表单的发票信息,因个人填写信息错误导致发票有误,不予重开!发票信息建议提前与贵单位财务部门确认。

5、退费

如您已经成功付款但临时有事不能参加本次培训,可联系主办方撤销席位全额退费;如在开课前3个工作日内(含3个工作日)要求撤销席位则退还80%的费用。

重大突破 | Nanopore R10芯片用于DMD阳性样本SNP和SV检测,解决准确度难题!

7月22日全球首批早期试用版Nanopore R10芯片抵达未来组测序中心,作为ONT公司投入商用的一种最新型的测序芯片,R10配有两对读取头,纳米孔通道更长,碱基信号读取更充分,测序准确度也因此得到极大提升!

图1 具有新型纳米孔的R10芯片

我们在本次实验中共测试了两张R10芯片,分别检测了1个人类DNA标准样本,及2个加了barcode的DMD阳性参考品混合样本。其中,两个阳性参考品分别为1个点突变及1个缺失突变。我们采用完全相同的实验方法对这两个样本的2.2Mb DMD基因全长区域进行富集,然后分别上机测序。

为了充分测试R10对于准确度的提升,在本次评测过程中,我们采用了实时高准确度(High-Accuracy)模式进行测序。实时测序结果显示,当测序仅开始半小时后,单张芯片产出已达到230Mb,对于单个DNA标准样本来说,相当于DMD基因全长100×的覆盖深度,已经满足后续分析的测序数据量。而当测序继续运行至约16小时后,两张芯片则分别产生3.3 Gb和3.9 Gb数据,远远超出单个样本所需数据量,这就为我们后续临床样本的检测提供了更多策略上的可能性。

R10实测下机数据展示

通过对测序数据的初步质控,R10芯片在read质量方面的表现令人惊艳不已:pass reads提供平均超过20的质量值(Qscore),而mapping后的reads准确度更是多数分布在95%以上!

图2 R10实测数据Pass read质量分布图

利用高质量R10数据检测DMD突变

杜氏肌营养不良(Duchenne Muscular Dystrophy,DMD)是一种常见的遗传性神经肌肉疾病,具有X连锁的隐性遗传模式。DMD基因全长2.2Mb位于X染色体上,是人类基因组中最大的基因之一,具有79个外显子,其突变类型主要包括:大片段的缺失或重复、微小突变(包括碱基的置换、重复、缺失或插入)和剪切区突变。由于DMD基因中有超过60%的突变均为大片段SV,为三代长读长测序的天然优势“战场”,那么接下来就随我们一起来看看高质量R10数据在检测DMD变异方面的能力吧!

我们对pass reads数据进行拆分,采用clairvoyante软件默认参数,在其中一个DMD阳性参考品中,成功检出一个C>T单碱基突变位点,排除掉少量由于拆分错误导致的reads错误比对,突变频率接近100%(图3)。

图3 检测到的SNV示意图

而对另外一个DMD阳性参考品采用sniffles软件默认参数进行比对时发现,在X染色体p21.1区段可以成功检测到一个26Kb的大片段deletion(图4)突变频率也接近100%,与参考基因组比对后可以清晰地看到reads的两个断点区域(图5)。

以上这两个结果都与我们的预期相符。

图4 大片段deletion示意图

图5  与参考基因组比对read断点示意图

从实测数据来看,Nanopore R10芯片不仅保持了ONT在大片段SV上的检测优势,同时在单碱基致病变异检测方面也展现出强大的潜力,在read准确度方面表现抢眼,一改之前大家对于三代测序单碱基质量差的印象,使得ONT在向临床诊断方向的应用又迈进了一大步。那么,R10还能带来哪些更亮眼的表现呢?未来组对于R10芯片的测评仍将继续进行,敬请期待!

未来组ONT文章||赤点石斑鱼染色体水平基因组发表

2019年7月20日福建省水产研究所与武汉未来组生物科技有限公司合作项目以“De novo Assembly of a Chromosome-Level Reference Genome of Red Spotted Grouper (Epinephelus akaara) Using Nanopore Sequencing and Hi-C”为题,发表在Molecular Ecology Resources(IF=7.049)期刊。福建省水产研究所黄种持研究员、郑乐云教授级高工,武汉未来组胡江,以及集美大学王艺磊教授为共同通讯作者,福建省水产研究所葛辉博士、林克冰研究员,武汉未来组申蜜为共同第一作者,刘雷为共同作者。该研究利用Nanopore测序和Hi-C技术获得了赤点石斑鱼染色体水平的高质量参考基因组,组装基因组大小为1.135 Gb,contig N50为5.25Mb,scaffold N50 达46.03 Mb。该高质量基因组为赤点石斑鱼的分子育种和功能基因组学研究提供了宝贵资源。同时,该研究也表明Nanopore测序产生的长读长序列可以有效提高基因组组装的连续性和完整性。

图1 文章发表信息

研究背景

赤点石斑鱼(Epinephelus akaara)属于辐鳍鱼纲(Actinopterygii)鲈形目(Perciformes)鲈亚目(Percoidei)鮨科(Serranidae),是中国、日本和东南亚最具经济价值的重要海洋鱼类之一。由于过度捕捞、食物来源减少、环境污染等导致赤点石斑鱼数量大减,已被列为濒危物种。同时,赤点石斑鱼雌雄同体,雌性先熟,是研究性别倒置,发育,遗传多样性和免疫的良好模型。但是,赤点石斑鱼分子水平的研究却有限,迄今尚未有参考基因组。

图2赤点石斑鱼

基因组组装

利用二代测序数据进行基因组调研分析,预测赤点石斑鱼基因组大小约1,111 Mb,杂合度约0.375%。利用Nanopore GridION X5测序仪对一尾成年雄性赤点石斑鱼(NCBI taxonomy ID: 215347)进行测序,过滤后获得106.29Gb的数据,read平均长度为18.35kb,readN50为26kb。采用Canu+Nanopolish+Pilon的组装策略,获得1.135Gb的基因组,与预测基因组大小相近,contig N50为5.25Mb。

为了进一步提升组装质量,研究者测序了112.83Gb的Hi-C数据,过滤后共有26294万个配对末端序列唯一映射到组装基因组的DpnII切割位点侧翼,随后利用LACHESIS软件进行聚类、排序和定向,将2,055 个contig序列挂载到24条染色体上,挂载率为95.55%,scaffoldN50 达46.03Mb(表1)。BUSCO数据库评估该基因组完整性为96.8% 。

基因组注释

基于Repbase和de novo repeat库,预测该基因组含有43.02%的重复序列,其中以DNA转座子类型的的重复序列最多,占16.73%(表2)。

通过de novo预测、同源比对预测并结合RNA-seq数据集,共预测基因23,923个(表3),其中注释到功能的基因有23,808个(99.5%)。

赤点石斑鱼的各项指标以及完整性均优于5月份发表的黑色石斑鱼参考基因组,可见采用Nanopore+Hi-C策略进行基因组组装优势明显。

表4 赤点石斑鱼与黑色石斑鱼基因组组装比较

本研究利用Nanopore测序技术的长读长优势结合Hi-C技术,组装出高质量赤点石斑鱼染色体水平的参考基因组,这一组装结果表明Nanopore测序产生的长读长序列可以有效地用于基因组组装,并显著提升基因组组装质量。对一个物种而言,完整的高质量的基因组序列是其广义研究中不可估量的宝贵资源,并且是基因组学、基因功能、分子和进化研究的坚实基础,基因组参考序列的质量在一定程度上也体现了该物种的研究进展和水平。

未来组率先获取Nanopore R10芯片,敬请期待超高共有序列准确度!

Nanopore准确度是大家关心的一个重要问题,而目前Nanopore测序准确度最高的R10芯片将于2019年7月22号在武汉未来组测序中心全国首发,这是继5月份引进全球首台商业化PromethION 48测序仪之后,未来组Nanopore测序服务的再次升级!R10是牛津纳米孔公司(Oxford Nanopore Technologies)开发的新型纳米孔测序芯片,相比于之前的R9.4.1版本,它的纳米孔通道更长,并具有双读头(dual reader-head),性能大幅度提升。

图1 未来组PromethION 48 测序仪

Reader head加倍

目前Nanopore测序通用版本R9.4.1有一个纳米孔通道,一个Reader head;而R10具有两个Reader heads,纳米孔通道更长,凭借这一特点R10能够检测更多的碱基信号,极大提升了同聚物区域的测序准确度。

图2 R10和R9.4.1纳米孔在同聚物区域的比较

Q50共有序列准确度

R10现在可以提供与R9.4.1相当的原始读取准确度,但提高了共有序列准确度。在模拟群落金黄色葡萄球菌(S. aureus)样本上已达到Q50(99.999%)的共有序列准确度,这相当于每100,000个碱基中只有1个错误!

图3 R10和R9.4.1原始读长准确度及共有序列准确度

不重叠的错误区域

如图4所示,合并金黄色葡萄球菌的数据集,发现R10和R9.4.1中的错误没有重叠,将两种类型的数据叠加在一起后极大地提高了序列的准确性,只有一个错误位点。因此R10和R9.4.1数据的组合可以相互校正产生更高的共有序列准确度。

图4 R10和R9.4.1错误分布没有重叠

测序通量对比

24小时运行时间的数据量比较显示,R10芯片产量在11Gb左右,相对于R9.4.1有所下降,但随着接下来对运行条件的进一步优化,通量还会得到进一步提高。

图5 R10和R9.4.1测序通量对比

以上为R10芯片在微生物等小型基因组上进行的测试,相比R9.4.1,具有双Reader head的R10芯片在同聚物区域的准确度、共有序列准确度方面得到了极大提升。同时R9.4.1和R10不重叠的错误区域,提供了利用两种数据的组合产生更高的共有序列准确性的新思路。

牛津纳米孔公司还将继续在软件,分析算法,化学试剂等方面进行优化,进一步改善R10芯片的产量,易用性和准确性,从而为纳米孔测序提供更广泛的应用。未来组作为纳米孔测序技术应用的先锋,将于2019年7月22号在武汉未来组测序中心全国首发R10芯片,并迅速在不同样品中评估和测试其性能和特点,最新进展敬请期待!

ONT P48+Ultra-long+自主算法——未来组超大型基因组组装服务隆重升级

随着测序技术的发展,人们能快捷地获得大多数生物基因组的遗传信息。但是,超大型基因组(≥30Gb)的测序和组装仍是世界性难题。一方面,超大型基因组组装所需的数据量往往达到Tb级别,想要快速获得测序数据则必须要求测序平台具有超高通量。另一方面,超大型基因组的物种往往具有大量高重复区域,这些区域犹如基因组“黑洞”,短读长测序技术难以跨越;同时,海量的短片段导致基因组组装也极为复杂,很难得到理想的效果。因此,急需要一种超高通量的测序仪,一种获得超长片段的方法,以及一套节约资源的组装算法,来攻克基因组测序领域最后的堡垒:超大基因组。

武汉未来组在超大型基因组组装领域持续深耕、发力,升级动植物超大型基因组测序组装服务:隆重推出ONT P48平台+Ultra-long技术+自主算法组合策略,从而将超大基因组的组装质量提升到Mb级别!

Nanopore PromethION 48——

三代测序仪中的产能怪兽!

Ultra-long技术——

获得Mb级别的超长读长片段!

未来组自主算法——

超大型基因组专用生信工具!

三方面的优化整合直击超大型基因组测序、组装痛点,是目前技术条件下超大型基因组组装方案的最优解

平台升级——ONT P48 

2019年5月17日,武汉未来组前瞻性引入全球首台商业化的Nanopore PromethION 48(P48)测序仪,成为纳米孔测序技术服务的先锋!目前所有类型三代测序仪中,P48的产能首屈一指,它具有48个流动槽,每个流动槽有多达3,000个纳米孔通道(总计144,000个),运行96小时可产生4.0-7.6Tb的数据,名副其实的产能怪兽!即使面对超大型基因组深度测序也能轻松实现一周测序一个100×的超大型基因组(基因组大小=30Gb),完全满足超大型基因组测序项目对数据量的需求!

读长升级——Ultra-long 跨越重复区域

牛津纳米孔测序技术有多种文库构建方法,其中Ultra-Long Reads的建库方法read N50长度可达50-100kb,Max_read可达Mb级别。采用Ultra-long Reads进行超大型基因组组装有三大优势:

1)轻松跨越重复区域。超大型基因组中的连续重复区域就像一个个“黑洞”,二代测序小短腿直接掉入深渊,三代测序小心翼翼能够跨过,而Ultra-LongReads能够轻松跨越连续重复区域,提供更多的序列信息,更便于组装过程重复片段划分。

2)显著提升组装质量。在基因组组装过程中可以通过增加读长获得理想组装质量[2],加入Ultra-Long Reads数据可以显著提升人类基因组组装效果,填补基因组中的缺口,甚至覆盖端粒重复区域[3]。有了Ultra-Long Reads,超大型基因组ContigN50上Mb不是梦!

3) 节约组装成本。相同测序深度下采用Ultra-Long的建库测序方法,产生用于组装超大型基因组的read数更少,降低了组装复杂度,减少了计算资源的使用,能够节省一定的组装成本。

未来组Ultra-long下机数据展示

*Yield,Read_Avg,read_N50,Pass_Reads_Avg_Score多个文库取平均值,read_Max取最大值。

组装工具升级——NextDenovo+NextPolish自主算法

NextDenovo(https://github.com/Nextomics/NextDenovo)和NextPolish(https://github.com/Nextomics/NextPolish),是未来组自主研发的专为三代测序长读长设计的高效校正组装和抛光算法。NextDenovo校正速度是其他校正软件的2-8倍,校正后的纳米孔数据一致性约为97-98%,大多数剩余误差位于均聚物或串联重复区域。NextPolish用于抛光三代测序长读长组装的原始contigs,修复由噪声read产生的碱基错误。利用NextDenovo和NextPolish再结合其他基因组组装工具,可将基于ONT数据组装的超大基因组contig N50提升至Mb水平!

超大型基因组升级组装策略

超大基因组升级组装流程

不同物种Ultra-Long组装案例

加入Ultra-long数据后可大幅度提升基因组组装指标。

参考文献:

[1] Ron Milo, Rob Phillips. How Big are Genomes?[B]CELL BIOLOGY BY THE NUMBERS, http://book.bionumbers.org/how-big-are-genomes/.

[2]  Henson J, Tischler G, Ning Z. Next-generationsequencing and large genome assemblies[J]. Pharmacogenomics, 2012, 13(8):901-915.

[3] Jain M, Koren S, Miga K H, et al. Nanoporesequencing and assembly of a human genome with ultra-long reads[J]. NatureBiotechnology, 2018, 36(4).

2019上半年武汉未来组高分文章展示

2019年转眼间已经过半,未来组三代测序项目成果也接连不断,今天组学君就给大家带来2019上半年未来组三代测序项目的8篇高分文章,累积IF达101.775涵盖动植物基因组、转录组、微生物基因组、表观遗传研究等各个领域,为您提供三代测序应用的高分文章思路。

01

栽培花生基因组揭示豆科核型,多倍体进化及作物驯化的秘密
Nature Genetics,01 May 2019IF=25.455

合作单位:福建农林大学

栽培种花生(Arachis hypogaea L.)为异源四倍体(AABB,2n= 4x = 40),亚基因组之间的密切关系和高比例的重复序列增加了栽培花生基因组的组装难度。

本研究以狮头企花生为材料,采用三代测序技术,结合Hi-C技术和高密度遗传图谱等完成了异源四倍体花生栽培种A、B亚基因组共20条染色体的精确组装,获得高质量的参考基因组。

比较基因组分析表明花生B亚基因组具有更多的基因和普遍的表达优势,52份种质材料的重测序分析表明花生可能起源于不同的subsp. hypogaea并且在不同地点独立驯化,同时,作者也对A亚基因组的真正起源提出了疑问。

02

高质量苹果基因组解析红色果实着色机制

Nature Communications,02 Apr 2019

IF=11.878

合作单位:中国农业科学院果树研究所

苹果基因组是苹果遗传研究和分子育种的基础,可推动苹果的可持续生产。尽管早前发布的高质量金冠(Golden Delicious)基因组使苹果育种研究取得了一些进展,但仅仅利用这些数据在发现新基因和描述基因组结构变异方面仍存在一些局限性。

本研究以来源于花药的苹果纯合系HFTH1为材料,采用三代PacBio测序技术,结合光学图谱Bionano和Hi-C技术辅助组装,获得高质量苹果基因组图谱(contigN50为6.99Mb,GDDH13基因组contigN50为620kb)。

比较基因组结果表明,TEs的动态变化可导致产生大量的SVs,这可能会对基因型产生影响。进一步研究证实了上述推测,研究者发现花青素生物合成的核心转录激活因子MdMYB1上游UTR区域的一个LTR反转录转座子的插入与果实红色相关联。

本研究的高质量参考基因组对GDDH13基因组进行了补充,可精确识别大的和复杂的SVs,同时,为苹果独特的生物学特征的比较基因组研究和种类基因组多样性研究奠定基础。

03

质粒编码的tet(X)基因在大肠杆菌中具有高水平的替加环素抗性

Nature Microbiology,24 Jun 2019

IF=14.300

合作单位:华南农业大学兽医学院

细菌耐药性一直是微生物研究的重点领域,随着碳青霉烯类药物和黏菌素耐药性的爆发,替加环素成为治疗多重耐药细菌感染的最后一道防线。

本研究发现了一个质粒介导的可移动的替加环素耐药基因tet(X4),将该基因转入到大肠杆菌能显著增强其对所有四环素类抗生素的耐药性。而且,包含tet(X4)基因的IncQ1质粒具有高效转移能力,这极大地增加了该耐药基因的传播风险。

研究者进一步探讨了tet(X4)阳性大肠杆菌在中国人群、家禽家畜及其周边环境中的流行情况,提出“one-health”策略,即通过对人类、动物及其生活环境进行跨部门监测和控制来应对抗生素耐药性,同时呼吁人们在动物和环境中合理使用四环素。

04

利用深度循环神经网络对牛津纳米孔测序数据进行DNA碱基修饰检测

Nature Communications,04 Jun 2019

IF=11.878

合作单位:费城儿童医院,中山大学中山眼科中心

深度循环神经网络广泛应用于人工智能领域,如手写识别、语音识别等序列特征建模。

研究者采用LSTM-RNN深度循环神经网络作为深度学习框架,采取两种独立的策略利用多个Nanopore测序数据集进行训练和校正,完成了5mC和6mA检测模型的建立。

该研究为Nanopore应用于表观修饰领域提供了重要的软件工具—DeepMod。首次将5mC的准确率提高到99%,实现了5mC的精准检测;首次建立了原核和真核通用6mA和5mC检测方法;并建立了首个Nanopore真核生物6mA修饰标准集。

05

染色质构象捕获技术解析糜子基因组近完成图

Nature Communications,25 Jan 2019

IF=11.878

合作单位:中国农业大学

糜子(Panicum miliaceum L.)作为一种古老的作物,具有生长周期短(~60–90d),耐盐碱的特性,尤其是极端抗旱,其耐旱能力甚至比蒸腾系数低于高粱、玉米、小麦的谷子还要强。

本研究结合了三代长读长测序技术、二代短读长测序技术、Bionano光学图谱、Hi-C染色体构象捕获等技术优势,获得了高质量的糜子基因组,通过对糜子基因组的深度挖掘,研究者揭示了糜子基因组中与抗生物胁迫和非生物胁迫的可能相关基因。系统发育分析揭示了糜子的异源四倍体化发生在591万年之内,而糜子和谷子的分化大约发生在1310万年前。

高质量糜子基因组序列不仅对理解糜子基因组四倍体化后的动态进化具有重要意义,而且对今后的糜子分子育种也有一定的参考价值,并将促进黍属植物与其他作物的比较基因组研究。

06

形态学和基因组学解析马里亚纳海沟狮子鱼深海适应性机制

Nature ecology & evolution,16 Apr 2019

IF=10.965

合作单位:中科院深海科学与工程研究所,水生生物研究所,西北工业大学生态与环境保护研究中心

本研究以生活在马里亚纳海沟6,000m深处以下的狮子鱼Pseudoliparis swirei为研究对象,通过形态学、基因组和转录组等多种分析手段揭示了马里亚纳海沟狮子鱼深海适应性的形态、生理变化及分子机制。

形态学观察发现,P. swirei具有一系列适应深海生活的形态特征,如透明的皮肤,膨大的胃部,不完全骨化的骨骼以及非闭合性颅骨。基因组分析显示P. swirei在骨骼发育、细胞膜流动性、蛋白质稳定性存在深海适应性基因突变。

本研究中发现的众多遗传变化揭示了脊椎动物物种如何在深海中生存和繁衍,提供了对脊椎动物的形态,生理和分子进化新的见解。

07

纳米孔测序技术揭示染色质调控基因表达的基础

Genome Research,14 Jun 2019

IF=9.944

合作单位:美国俄亥俄州立大学

核小体的动态占据导致两种不同的染色质状态:“开放”(具有稀疏核小体的活跃基因组区域)和“闭合”(具有致密核小体的不活跃基因组区域)。核小体的占据和染色质开放状态的动态变化在转录、DNA复制和修复中起重要的调节作用。

本研究提出的一种新的实验方法MeSMLR-seq,实现了在长距离-单个核苷酸分子水平进行核小体和染色质状态测定,为基因表达的染色质调控研究提供了一个有力工具。

研究者利用MeSMLR-seq的独特序列,揭示了转录起始位点周围沉默基因和活跃基因具有差异的核小体组织原则。利用多个基因组区域的染色质状态与单细胞RNA-seq数据一起,揭示了转录重编程过程中相邻基因的染色质偶联变化。

08

5’-Cap捕获的Direct RNA测序揭示Piwi对蝗虫体内TE衍生序列的影响

RNA Biology,14 Apr 2019

IF=5.477

合作单位:中科院北京生命科学研究院,中科院动物研究所,中国科学院大学

Nanopore 长读长Direct RNA测序不需要经过反转录可获得完整的RNA转录本。

本研究通过 5’-Cap捕获的方法富集全长RNA转录本,利用Nanopore对RNA直接进行测序,以天然RNA形式描述飞蝗全长转录本特征。研究者分析了蝗虫转录中TE外显子化模式,揭示了TE外显子化的广泛建立以及蝗虫转录组中TEs对RNA剪接的重要作用。

该研究结果证明了5’-Cap捕获法的Direct RNA测序在描述包含重复序列的全长RNA转录本中具有重要作用。这是国内Direct RNA测序相关研究成果的首次亮相,武汉未来组承担了Direct RNA的建库测序工作。

未来组项目文章||三代测序助力发现替加环素耐药基因

2019年6月24日,华南农业大学兽医学院刘雅红教授团队在微生物学领域顶级期刊Nature Microbiology(IF=14.300)发表题为“Plasmid-encoded tet(X) genes that confer high-level tigecycline resistance in Escherichia coli”的研究成果。该研究发现了一个质粒介导的可移动的替加环素耐药基因tet(X4),将该基因转入到大肠杆菌能显著增强其对所有四环素类抗生素的耐药性。而且,包含tet(X4)基因的IncQ1质粒具有高效转移能力,这极大地增加了该耐药基因的传播风险。华南农业大学兽医学院孙坚教授和博士生陈冲为本研究论文共同第一作者,刘雅红教授、廖晓萍教授和美国Hackensack-Meridian探索与创新健康中心陈亮教授为本论文的共同通讯作者,武汉未来组承担了本研究中全部三代测序的建库、测序工作。

研究背景

细菌耐药性一直是微生物研究的重点领域,肠杆菌科细菌耐药性的出现和蔓延对人类和动物的健康构成了严重威胁。碳青霉烯类药物、黏菌素和替加环素被认为对多重耐药的革兰氏阴性细菌有效,然而随着碳青霉烯类药物和黏菌素耐药性的爆发,替加环素成为治疗多重耐药细菌感染的最后一道防线。

替加环素的耐药性不可避免的出现,四环素破坏酶Tet(X)具有一种独特的酶促四环素失活机制,研究已证实Tet(X)在体外对包括替加环素在内的所有四环素有降解活性,然而其分布、遗传结构和临床意义仍有待探索。在本研究中,作者描述了一个质粒介导的可移动替加环素耐药基因tet(X4),并探讨了tet(X4)阳性大肠杆菌在中国人群、食用家禽家畜及其周边环境中的流行情况(图1)。

图1 中国tet(X4)样品抽样区域图

主要结果

1、tet(X4)特征研究

研究者2017年从猪粪中分离到一株具有替加环素耐药性的大肠杆菌菌株LHM10-1,全基因组测序结果表明LHM10-1的序列类型属于ST515,包含一条4.81Mb的染色体和6个质粒。其中在pLHM10-1-p6质粒上发现了一个全长1158 bp 编码385个氨基酸(图2a)的tet(X)-like基因,命名为tet(X4)。基因克隆实验、平板扩散分析以及四环素降解实验均证明Tet(X4)蛋白能够对整个四环素家族产生耐受性(图2b,c,d)。体内实验表明tet(X4)阴性菌株感染小鼠对替加环素处理高度敏感,而替加环素对tet(X4)阳性菌株感染的小鼠治疗24小时后无明显影响(图2e),由此推测,tet(X4)基因的存在可能是导致替加环素治疗失败的原因之一。

图2 Tet(X4)在体内外对四环素的作用

2、pLHM10-1-p6质粒特征分析

对包含tet(X4)序列的质粒pLHM10-1-p6分析表明,该质粒属于宽宿主范围的IncQ1类质粒,与其他IncQ1质粒比较,它们共享类似的序列区域(图3)。进一步实验发现,可以将替加环素耐药性从大肠杆菌LHM10-1转移到多种实验室菌株中;连续220世代无抗生素培养后,pLHM10-1-p6质粒仍然在不同菌株中稳定存在,表明tet(X4)具有很高的可转移性和稳定性。这也使得质粒pLHM10-1-p6在临床耐碳青霉烯类肠杆菌(CRE)菌株上也表现出良好的转入能力,这些结果暗示:质粒介导的可移动的替加环素耐药基因tet(X4)有可能产生真正的泛耐药菌株,从而导致感染无药可治。

图3 携带tet(X4)基因的pLHM10-1-p6质粒特征

3、tet(X4)阳性菌株的流行情况

本研究从4,189个不同地区和来源的样本中共检测到42个菌株携带tet(X4)基因,这些阳性大肠杆菌分离株在中国东部和南部5个省均有发现(图1)。药敏试验表明,42个tet(X4)阳性菌株全部具有对替加环素、四环素、磺胺甲恶唑-三甲氧苄啶和氟苯尼考的耐药性。质粒分析发现57.1%(24/42)的tet(X4)阳性菌株含有相同的IncQ1类型的pLHM10-1-p6-like质粒。在自传播辅助质粒存在下,IncQ1类型质粒能够转移到广泛的细菌宿主中。携带tet(X4)基因的pLHM10-1-p6-like质粒在转移的过程中,常见的携带mcr-1(一种粘菌素抗性基因)的质粒可以作为其辅助质粒,这进一步促进了替加环素耐药性的传播。

讨论

以上研究表明tet(X4)基因导致的替加环素耐药性菌株可能已经在中国传播,作者推测这种新型可移动替加环素耐药性菌株的出现,很有可能是一代或二代四环素的使用导致的。在中国,替加环素只被批准用于治疗人类的临床感染,第一代和第二代四环素被广泛用于治疗食用家禽家畜的感染治疗或者促生长使用,这很可能为替加环素耐药菌的出现提供了选择压力。来自环境、兽医使用以及临床实践的持续选择压力将可能加速tet(X4)等抗性基因的传播。因此,作者强调采用“one-health”策略,即通过对人类、动物及其生活环境进行跨部门监测和控制来应对抗生素耐药性,同时呼吁人们在动物和环境中合理使用四环素。

未来组项目文章||纳米孔测序技术揭示染色质调控基因表达的基础

2019年6月14日,美国俄亥俄州立大学的区健辉(Kin Fai Au)博士团队在Genome Research(IF=9.944)杂志在线发表题为“Single-molecule long-read sequencing reveals the chromatin basis of gene expression”的研究论文,该研究提出一种新的实验方法MeSMLR-seq(methyltransferase treatment followed by single-molecule long-read sequencing)外源甲基转移酶处理后进行纳米孔测序,从而实现在单个核苷酸分子水平进行核小体和染色质状态的长距离测定。区健辉课题组的王运浩博士和王安琪博士为共同第一作者,武汉未来组承担了其中的ONT建库、测序工作。

图1 文章信息

研究背景

在真核生物中,细胞面临遗传信息存储和包装问题。DNA作为遗传信息的载体,通过缠绕组蛋白八聚体(H2A, H2B, H3和H4)形成染色质的基本单元——核小体。核小体由”linker DNA”连接伸长,核小体的动态包装导致两种不同的染色质状态:“开放”(具有稀疏核小体的可访问和活跃基因组区域)和“闭合”(具有致密核小体的不可访问和不活跃基因组区域)。核小体的配置和染色质开放状态的动态变化在转录、DNA复制和修复中起重要的调节作用。

文章简介

基于第二代“短读长”测序技术或单细胞测序技术的方法可以在群体或单细胞水平检测核小体配置和染色质开放状态,但是无法提供复杂的长距离核小体配置和染色质开放状态的异质性信息。牛津纳米孔测序技术(Oxford Nanopore Technologies,ONT),利用碱基穿越纳米孔时产生的原始电信号信息在单分子水平检测DNA修饰,无需PCR扩增和亚硫酸氢盐转化,并且极大地增加了测序的长度。因此,ONT测序read可以覆盖多个核小体的组合和跨越多个基因组元素的不同染色质状态。

本研究利用ONT测序的长read序列和丰富的单碱基原始信息,开发了MeSMLR-seq方法(图2)和相应的生物信息学工具NP-SMLR,来研究长距离核小体配置和染色质开放状态的异质性及动态变化。

图2 MeSMLR-seq 流程

主要结果

研究者首先对酵母基因组中的核小体配置进行单个DNA分子水平的检测和定相,在不同核小体覆盖度下的检测均能达到80%准确度,表明了MeSMLR-seq对核小体单分子远程比对的准确性和稳健性(图3)。在单细胞水平检测发现,单个MeSMLR-seq读数跨越长距离范围,可以测定多个核小体(中位数为37),因此,MeSMLR-seq可捕获DNA分子中核小体占有率的动态性和异质性。

图3 利用MeSMLR-seq数据进行5mC检测和核小体占有率检测

转录起始位点在转录调控中有重要作用,MeSMLR-seq揭示了其周围沉默基因和活跃基因的差异核小体组织原则。对于转录沉默的基因,在一个细胞群体中核小体配置具有更大的异质性;而对于转录激活的基因,核小体的间距分布具有更高的一致性(图4)。

图4 转录起始位点周围沉默基因和活跃基因的差异核小体组织原则

进一步研究表明基因表达与染色质开放状态之间呈正相关关系,随后进行了单分子染色质开放状态长距离比对性能的评价,结果表明MeSMLR-seq能够分析相邻基因的偶联染色质状态,检测细胞群中染色质状态的异质性。最后,对两个相邻的葡萄糖转运蛋白基因的染色质偶联状态变化研究表明,Open-HXT3与Closed-HXT6耦合模式的细胞亚群比例随葡萄糖浓度降低而降低,而Closed-HXT3 and Open-HXT6耦合模式的则相反(图5)。

图5 HXT6HXT3基因的染色质开放状态与共表达之间的“偶联”关系

小结

综上所述,本研究提出的一种新的实验方法MeSMLR-seq,实现了在长距离-单个核苷酸分子水平进行核小体和染色质状态测定,为基因表达的染色质调控研究提供了一个有力工具。本研究利用MeSMLR-seq的独特输出,对转录起始位点周围核小体的组织规则以及组合的异质性进行了研究。最后利用多个基因组区域的染色质状态与单细胞RNA-seq数据一起,定量研究了染色质开放状态与基因转录之间的关系,揭示了转录重编程过程中相邻基因的染色质偶联变化。

新品∣未来组三代群体基因组SV:ONT P48一出,谁与争锋?

群体遗传学研究的一个重要手段是利用高通量测序技术提供的DNA序列变异信息来推测作用于基因组的各种力量(突变,自然选择,群体结构等)是如何影响生物演化进程的。基于二代测序短读长的群体基因组重测序虽能同时运行多个群体样本的测序,但该技术对大尺度结构变异(Structural Variations,SVs,>50bp)检测存在着先天劣势;而利用其他长读长测序技术进行群体基因组重测序则存在花费昂贵,无法并行运行多个群体样本,群体测序周期较长的缺点。武汉未来组首家引入的ONT PromethION 48(P48)平台将完美解决基于上述平台群体基因组重测序的瓶颈,一次能同时运行48个样本,同时兼具高通量,长读长,且成本优廉的优势,将会成为广大动植物群体基因组科学家的研究新利器。

 

新风潮:以ONT PromethION为平台的三代群体SV研究目的与意义

现有研究表明单一的一个参考基因组不能反映整个物种的全部多样性,而群体SV检测则可以提供更多的生物标记来描述群体特征;选择合适的群体与表型,科学家们能识别并验证与农艺性状和表型性状相关的SVs,填补由于短读长技术局限造成的功能SV研究空白。

将三代测序技术应用于群体研究始于2018年,三代测序研究先锋Michael Schatz团队利用Nanopore PromethION测序平台,实现在100天内测序100个番茄基因组的目标。目前在已完成全基因组测序的12个番茄样本中该团队发现样本之间存在显著差异,每个样品具有25,000-45,000个结构变异,大多数为插入和缺失,鉴定出先前使用短读长测序所遗漏的数千种SVs。研究表明[1]SV影响植物的抗病、花期、株高、环境适应等许多重要性状,群体的结构变异分析对优良品种选育、差异性状研究等具有重要意义(表2)。玉米基因组中已经发现了大量的农艺性状受CNV控制,从生物、非生物胁迫响应到株型和杂种优势。水稻是研究基因组SV对性状影响的模式物种之一,迄今已经发现超过2000个注释基因受CNV影响。最近在番茄[2]中发现包含ej2W位点的83kb大片段串联重复,抑制ej2W对产量的负面影响。这些案例都表明了染色体结构变异尤其是基因拷贝数的变异,在动植物的育种过程中的重要应用价值。

表1 SV对不同作物品种的农艺性状具有明显影响[1]

ONT P48平台在 SV calling方面的独特优势

SV检测最大的难点实际上是read太短导致的,因此二代测序在SV检出率和准确性方面存在先天劣势(图1),短读长对于高重复序列区域无解,据报道[3]短读长测序技术对SV的检出率只有10%-70%,而假阳性率高达89%,并且无法检测复杂或嵌合SV。而基于Oxford Nanopore的长读长测序可以显著提高SV检测的准确性和分辨率。长读长测序检测到的SVs数量是短读长的3-4倍,尤其是在50-1000bp范围内[4],并且可以轻松跨越重复区域,甚至是整个SV区域,因此有更高的置信度来确定断点,只需要10~30× 覆盖度,便可以达到80%左右的检出率和大于80%的准确性(图2)。

图1 短读长的错误映射导致SV检测的系统性误差[3]

图2 ONT不同覆盖度下的SV检出率和准确性[3]

另一方面,相比其他长读长平台,ONT PromethION 48(P48)在reads长度、群体SV研究周期和应用范围上存在明显优势。

ONT P48的平均read N50长度在25-40kb,而Ultra-Long Reads的建库方法其reads N50长度甚至可达50-100kb,从而使得ONT P48在重复区域有更高的比对能力,能够覆盖更多的完整SV,提升对大片段SV(>10kb)和稀有SV检测的敏感性(图3)

图3长read能够分裂对齐(A)或跨越(B)完整的结构变异[4]

其他长读长测序平台需要多个cell才能达到SV calling所需要的数据量,无法满足群体基因组同时测序多个动植物基因组样本的要求。而 ONT PromethION 48(P48)在群体基因组研究上存在明显的周期优势,P48能最多同时并行多达48个样本,且单Cell产量能达到大部分物种30×的数据量需求,极大压缩了群体测序所需时间,在群体测序周期方面有明显优势。

P48对大片段SV(>10kb)SV和稀有SV检测的敏感性,加上可承担的群体测序周期,使其对群体SV检测的应用范围更广,能够完美应对大群体、复杂基因组样本的SV检测。

表2 不同平台性能及SV检测效果比较

ONT P48三代群体SV应用范围

应用群体

玉米、水稻、番茄、油菜等主要农作物的遗传群体或自然群体;猪、牛、羊等重要家畜遗传群体;人类(遗传疾病及癌症研究)。

应用方向

挖掘全新、稀有、大尺度结构变异;与重要农艺性状相关联的SVs功能研究;基于SV尺度的群体进化研究等。

群体大小

动物样本数≥5,植物样本数≥10。

单样本测序深度

15×左右,根据实际群体大小和样本情况最终确定。

三代群体SV生信分析基本内容

ONT P48 三代群体SV活动内容

夏天正是万物繁茂的时候,基因组群体SV研究正当时。借本次武汉未来组P48机器服务首发的机会,未来组现全新推出ONT P48三代群体SV暑期特惠活动(已签单旧项目不在本次活动范围内),活动内容如下:

*组装样本基因组不超过4Gb,且不承诺组装指标。

活动价格请联系 153 8703 7487(未来组营销中心) 或者请直接联系未来组当地销售人员

活动邮箱:support@nextomics.org

本次活动最终解释权归武汉未来组所有

参考文献:

[1]I. Gabur, H. S. Chawla, R. J. Snowdon, and I. A. P. Parkin, “Connecting genome structural variation with complex traits in crop plants,” Theor Appl Genet, vol. 132, no. 3, pp. 733–750, Mar. 2019.

[2]S. Soyk et al., “Duplication of a domestication locus neutralized a cryptic variant that caused a breeding barrier in tomato,” Nat. Plants, vol. 5, no. 5, pp. 471–479, May 2019.

[3]F. J. Sedlazeck et al., “Accurate detection of complex structural variations using single molecule sequencing,” Bioinformatics, preprint, Jul. 2017.

[4]W. De Coster and C. Van Broeckhoven, “Newest Methods for Detecting Structural Variations,” Trends in Biotechnology, p. S0167779919300368, Mar. 2019.

[5]Wang, Wensheng, et al. “Genomic variation in 3,010 diverse accessions of Asian cultivated rice.”Nature 557.7703 (2018): 43.

PAG Asia 2019||未来组诚邀您参加ONT-NextOmics joint workshop

一年一度的亚洲动植物基因组大会(PAG Asia)这次来到了美丽的鹏城深圳,此次会议将于6月6日-8日在福田香格里拉大酒店举行。未来组诚邀您莅临18-19号展位并参加ONT-NextOmics joint workshop,北京希望组&武汉未来组研究院院长Min Sung Park博士将会在workshop发表未来组在纳米孔测序与应用的演讲,共同探讨动植物基因组纳米孔测序最新成果和进展!

武汉未来组作为全球最大的三代测序应用公司,自2012年来在三代测序及应用领域持续深耕七年有余。自2017年开始搭建Oxford Nanopore测序服务中心,并于同年九月获得Nanopore官方服务资质认证。2019年5月17日,前瞻性引入全球首台商业化的Nanopore PromethION 48(P48)测序仪,成为全球最新纳米孔测序技术服务的先锋!在大型测序平台构建基础上,未来组自主研发了基于ONT数据的系列组装纠错及算法软件NextDenovo,同时与华为云合作,将纳米孔测序数据分析流程整合到云计算平台上,为全球客户提供快速、高效的纳米孔长读长测序计算和存储服务。在高通量测序平台、自主算法、高性能计算集群三重优势加持下,未来组成功突破超大基因组(≥30Gb)的测序组装困难,完成首个ContigN50达Mb级别的超大基因组组装!

PAG会议是国际知名的基因组学盛会,专家们汇集一堂,报告、研讨模式生物、畜禽、水生生物、作物、微生物等各物种领域的基因组学进展,内容涉猎广泛深入,是动植物基因组学领域最高水平的国际会议。由于每年PAG会议都会有一系列新的课题进展和研究方法的发布,已经成为动植物基因组学领域的学者们最为关注的国际盛会之一。

EXPERT PLENARY SPEAKERS

Plenary Lectures

SCHEDULE

THURSDAY,JUNE,2019

FRIDAY,JUNE07,2019

SATURDAY,JUNE08,2019

欢迎国内外参会学者莅临18-19号展位,未来组将与您共同探讨动植物基因组学研究中的新技术和新思路,深圳,不见不散!

会议链接:

https://www.intlpagasia.org/2019/index.php/en/